СБОРНИК ТЕСТОВЫХ ЗАДАНИЙ ПМ. 03 ПРОВЕДЕНИЕ ЛАБОРАТОРНЫХ БИОХИМИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ


Управление образования и науки Тамбовской области
Тамбовское областное государственное бюджетное профессиональное образовательное учреждение
«Тамбовский областной медицинский колледж»
РАССМОТРЕНО
на заседании ЦМК клинико-лабораторных дисциплин
Протокол № 5 от « 31» марта 2016 г.
Председатель ЦМК______________
Т.В. Корчагина
РАССМОТРЕНО И ОДОБРЕНО
на заседании методическогосовета от «__»________2016 г. УТВЕРЖДАЮ
Зам. директора по УВР
___________________
А.Н. Балабанова
«___» 2016 г.
СИТУАЦИОННЫЕ ЗАДАЧИ
ПМ.03 ПРОВЕДЕНИЕ ЛАБОРАТОРНЫХ БИОХИМИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ
МДК 03.01 Теория и практика лабораторных биохимических исследований
для специальности
31.02.03 Лабораторная диагностика
(базовая подготовка)
Преподаватель: Корчагина ТВ.
Тамбов, 2016
ПОЯСНИТЕЛЬНАЯ ЗАПИСКА

Ситуационные задачи составлены в соответствии с требованиями Федерального государственного образовательного стандарта среднего профессионального образования по специальности 31.02.03 «Лабораторная диагностика» (базовый уровень образования) по профессиональному модулю:
ПМ.03 ПРОВЕДЕНИЕ ЛАБОРАТОРНЫХ БИОХИМИЧЕСКИХ
ИССЛЕДОВАНИЙ
По итогам решения ситуационных задач студенты должны овладеть следующими общими компетенциями:
Код Наименование результата обучения
ОК 1. Понимать сущность и социальную значимость своей будущей профессии, проявлять к ней устойчивый интерес.
ОК 2. Организовывать собственную деятельность, выбирать типовые методы и способы выполнения профессиональных задач, оценивать их эффективность и качество
ОК 3. Принимать решения в стандартных и нестандартных ситуациях и нести за них ответственность.
ОК 4. Осуществлять поиск и использование информации, необходимой для эффективного выполнения профессиональных задач, профессионального и личностного развития.
ОК 5. Использовать информационно-коммуникационные технологии в профессиональной деятельности.
ОК 6. Работать в коллективе и команде, эффективно общаться с коллегами, руководством, пациентами.
ОК 7. Брать ответственность за работу членов команды (подчиненных), за результат выполнения заданий.
ОК 8. Самостоятельно определять задачи профессионального и личностного развития, заниматься самообразованием, осознанно планировать повышение квалификации.
ОК 9. Ориентироваться в условиях смены технологий в профессиональной деятельности.
ОК 10. Бережно относиться к историческому наследию и культурным традициям народа, уважать социальные, культурные и религиозные различия.
ОК 11. Быть готовым брать на себя нравственные обязательства по отношению к природе, обществу и человеку.
ОК 12. Оказывать первую медицинскую помощь при неотложных состояниях.
ОК 13. Организовывать рабочее место с соблюдением требований охраны труда, производственной санитарии, инфекционной и противопожарной безопасности.
ОК 14. Вести здоровый образ жизни, заниматься физической культурой и спортом для укрепления здоровья, достижения жизненных и профессиональных целей.
По итогам решения ситуационных задач студенты должны овладеть следующими профессиональными компетенциями:
Код Наименование результата обучения
ПК 3.1. Готовить рабочее место для проведения лабораторных биохимических исследований.
ПК 3.2.
Проводить лабораторные биохимические исследования биологических материалов; участвовать в контроле качества.
ПК 3.3. Регистрировать полученные результаты
ПК 3.4. Проводить утилизацию отработанного материала, дезинфекцию и стерилизацию использованной лабораторной посуды, инструментария, средств защиты.
В ситуационные задачи по биохимии включены вопросы всех разделов программы. Особое внимание уделено вопросам преаналитического этапа биохимических исследований, причинам недостоверности информации, получаемой в ходе биохимических исследований. Обращено внимание на трактовку результатов исследований, санитарно – противоэпидемиологический режим в КДЛ и контроль качества лабораторных исследований.
Предложенные ситуационные задачи позволяют объективно оценить уровень профессиональных компетенций и степень подготовленности выпускника к практической профессиональной деятельности.
КРИТЕРИИ ОЦЕНКИ РЕШЕНИЯ
СИТУАЦИОННОЙ ЗАДАЧИ
«5» (отлично) - выставляется за полный, безошибочный ответ. Студент правильно определяет понятия и категории, выявлять основные тенденции и противоречия, свободно ориентироваться в теоретическом материале.
«4» (хорошо) - выставляется за правильные и достаточно полные ответы, не содержащие ошибок и упущений. Оценка может быть снижена в случае затруднений студента при ответе на вопросы преподавателя. При решении ситуационных задач допущены отдельные ошибки.
«3» (удовлетворительно) - выставляется при недостаточно полном ответе, при наличии ошибок и некоторых пробелов в знаниях студента. Ситуационная задача решена не полностью.
«2» (неудовлетворительно) - выставляется в случае отсутствия необходимых теоретических знаний по дисциплине, ситуационная задача не решена.
СИТУАЦИОННЫЕ ЗАДАЧИ ПО ПМ.03 ПРОВЕДЕНИЕ
ЛАБОРАТОРНЫХ БИОХИМИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ
ЗАДАЧА № 1.
Медицинский техник приготовила сыворотку для определения содержания билирубина, калия, активности ферментов и обнаружила в ней признаки гемолиза.
Задания:
1. Укажите признаки гемолиза.
2. Укажите возможные причины гемолиза.
3. Можно ли такую сыворотку использовать для проведения исследования?
4. Как влияет гемолиз сыворотки на результаты определения содержания билирубина, активности ферментов, концентрации калия и натрия?
5. Как предотвратить гемолиз крови на этапе получения сыворотки?
ЗАДАЧА № 2.
При определении содержания билирубина в крови больного с подозрением на вирусный гепатит сыворотка 2 часа простояла на столе у ярко освещенного солнцем окна.
Задания:
1. Можно ли считать результаты исследования достоверными? Дать обоснование.
2. Как влияет подготовка больного на результаты определения билирубина?
3. Как влияет правильность забора и доставки крови на результат?
4. Расскажите, как определить непрямой билирубин.
5. Для чего при определении билирубина по методу Иендрашика используют кофеиновый реактив?

ЗАДАЧА № 3.
Утром в лабораторию из стационара поступила кровь больного с подозрением на сахарный диабет для определения содержания глюкозы, взятая накануне вечером.
Задания:
1. Достоверен ли будет результат анализа? Дать обоснование.
2. Как подготовить пациента к исследованию?
3. Какие требования предъявляются к сыворотке для определения глюкозы?
4. Дайте характеристику методам определения глюкозы в биологических жидкостях.
5. Чем обычно проводят депротеинирование крови?


ЗАДАЧА № 4.
В ходе выполнения анализа определения активности трансаминаз в крови больного с инфарктом миокарда температура в термостате во время инкубации проб достигла 60° С.
Задания:
1. Как это отразится на результатах исследования?
2. Укажите на возможные ошибки при определении активности ферментов.
3. Как проводится ферментодиагностика инфаркта миокарда?
4. Для чего при определении трансаминаз к пробам добавляют ДФГ?
5. Можно ли использовать гемолизированную сыворотку для определения активности трансаминаз?

ЗАДАЧА № 5.
При внутрилабораторном контроле воспроизводимости метода определения содержания кальция в крови один из результатов определения на контрольной карте находится вне предела X + 3S (три среднеквадратических отклонения).

Задания:
1. Можно ли выдавать результаты анализов в этом
2. На что указывает данный контрольный критерий?
3. Как проводится контроль воспроизводимости?
4. Какие методы определения кальция в крови вы знаете?
5. Можно ли для этого определения использовать гемолизированную сыворотку?

ЗАДАЧА № 6.
Пациенту с подозрением на хроническую почечную недостаточность назначен анализ крови на содержание креатинина.
Задания:
1. Какие рекомендации должен получить пациент по подготовке к анализу?
2. Какими методами определяют содержание креатинина в биологических жидкостях?
3. Почему так важно соблюдение временных параметров при определении креатинина?
4. От чего зависят референтные величины содержания креатинина в крови?
5. Для какой патологии наиболее показательно увеличение содержания креатинина в крови?

ЗАДАЧА № 7.
Содержание общих липидов в крови больного сахарным диабетом значительно превышает норму.
Задания:
1. Как подготовить пробирки для определения общих липидов?
2. Соответствует ли результат исследования заболеванию?
3. Как утилизируют остатки биологических жидкостей?
4. Какими методами проводят определение содержания общих липидов в крови.
5. Можно ли для определения общих липидов в крови использовать хилѐзную сыворотку?

ЗАДАЧА № 8.
При проведении тимоловой пробы определение оптической плотности было проведено на фотоколориметре КФК-2, а для количественной оценки результатов была использована калибровочная таблица для фотоколориметра КФК-3.
Задания:
1. Можно ли выдавать результат исследования в этом случае?
2. Как строится калибровочный график для тимоловой пробы?
3. Как по результатам определения тимоловой пробы отличить паренхиматозную желтуху от обтурационной?
4. Какие осадочные пробы Вы еще знаете?
5. Каковы причины изменения осадочных проб при патологии?

ЗАДАЧА № 9.
При исследовании показателей свертывающей системы крови больного перед операционным вмешательством медицинский техник использовала пробирку с мелкими царапинами на дне.
Задания:
1. Как это отразится на результатах анализов?
2. Какие требования предъявляются к посуде для исследований показателей коагулограммы?
3. В каком соотношении берется кровь и антикоагулянт для получения плазмы?
4. В чем заключается механизм антикоагулянтного действия цитрата и оксалата натрия?
5. Можно ли использовать для коагулологических исследований плазму с признаками гемолиза?
ЗАДАЧА № 10.
При определении содержания фракций билирубина в крови медицинский техник провела определение оптической плотности и общего и прямого билирубина спустя 15 минут после добавления диазореактива. В результате исследования содержание связанного билирубина составило 50% от содержания общего.
Задания:
1. Можно ли быть уверенным, что были получены истинные результаты? Обосновать ответ.
2. Дайте характеристику фракций билирубина.
3. Как изменяется содержание билирубина при остром вирусном гепатите?
4. Почему так важно точно соблюдать время определения оптической плотности прямого билирубина?
5. Для чего используют акселераторы в данном определении? Назовите их.

ЗАДАЧА №11.
Пациенту с подозрением на опухоль предстательной железы назначено
определение активности кислой фосфатазы в крови. Забор пробы венозной крови проведен в 8 часов утра, в лабораторию кровь доставлена в 11 часов.
Задания:
1. Достоверен ли будет результат анализа? Обосновать ответ.
2. Какие рекомендации следует дать пациенту по подготовке к исследованию?
3. Укажите особенности подготовки сыворотки для определения активности кислой фосфатазы.
4. Какие ингибиторы применяют при определении активности общей кислой фосфатазы и простатической изоформы фермента?
5. Каково клинико-диагностическое значение этого исследования?

ЗАДАЧА №12.
В лабораторию доставлена проба крови больного с подозрением на миеломную болезнь для определения общего белка. Полученная сыворотка оказалась гемолизированной.
Задания:
1. Как обеспечить достоверный результат в этом случае?
2. Какие рекомендации необходимо дать пациенту по подготовке к анализу?
3. Какими методами проводят определение общего белка?
4. На чѐм основано определение общего белка крови биуретовым методом?
5. Как построить калибровочный график для определения общего белка?
ЗАДАЧА №13.
В централизованную лабораторию доставлена проба венозной крови на
определение белковых фракций. Полученная сыворотка оказалась молочно-белого цвета.
Задания:
1. Дайте характеристику данному виду сыворотки.
2. Можно ли использовать данную сыворотку для электрофоретического разделения белков сыворотки крови?
3. На чѐм основано определение белковых фракций методом электрофореза?
4. Какие преимущества имеет электрофорез на ацетатной пленке по сравнению с электрофорезом на бумаге?
5. Какие фракции белков крови выделяются методом электрофореза?

ЗАДАЧА № 14.
В централизованную биохимическую лабораторию доставлена плазма для определения в ней содержания мочевины.
Задания:
1. Можно ли в данной биологической жидкости определять содержание мочевины?
2. Как подготовить больного к анализу?
3. Какими методами можно определить содержание мочевины в крови?
4. На чем основано определение мочевины уреазным методом?
5. Укажите клинико-диагностическое значение этого определения.

ЗАДАЧА № 15.

В биохимическую лабораторию доставлена сыворотка крови больного с
диагнозом: «Сахарный диабет» для определения содержания глюкозы.
Задания:
1. Допускается ли гемолиз сыворотки при определении концентрации глюкозы?
2. В каких биологических жидкостях определяют концентрацию глюкозы?
3. Назовите методы определения глюкозы в биологических жидкостях.
4. Какой принцип лежит в основе определения содержания глюкозы в крови глюкооксидазным методом?
5. Могут ли остатки хромовой смеси в пробирке повлиять на результат определения содержания глюкозы?
ЗАДАЧА № 16.
Больному с подозрением на сахарный диабет назначен тест толерантности к глюкозе (ТТГ).
Задания:
1. Какие рекомендации дают пациенту по подготовке к исследованию?
2. Как проводится тест толерантности к глюкозе?
3. В каких случаях нельзя проводить ТТГ?
4. Как построить гликемическую кривую?
5. Допустим ли гемолиз сыворотки при проведении этого теста?

ЗАДАЧА № 17.
В лабораторию доставлена проба крови для проведения тимоловой пробы. Сыворотка получена с незначительным гемолизом.
Задания:
1. Можно ли провести тимоловую пробу в данном случае?
2. Каковы особенности подготовки пациента к тесту?
3. На чем основаны осадочные пробы?
4. Как влияют белки острой фазы на коллоидоустойчивость сыворотки?
5. Какие особенности имеет построение калибровочного графика для определения тимоловой пробы?

ЗАДАЧА № 18.
В лабораторию доставлена проба крови женщины 60 лет на определение содержания холестерина.
Задания:
1. Что должен знать пациент о подготовке к анализу?
2. Как влияет положения тела во время забора крови на результат?
3. Какими методами проводят определение содержание общего холестерина в крови?
4. Как зависит концентрация холестерина в крови от концентрации женских половых гормонов?
5. Как подготовить посуду к определению холестерина в крови?

ЗАДАЧА № 19.
В лабораторию доставлена проба крови на определение ЛПНП.
Задания:
1. Укажите правила приготовления сыворотки крови.
2. Какие рекомендации следует дать пациенту по подготовке к анализу?
3. Как проводят типирование классов липопротеидов?
4. Как связаны концентрация холестерина и содержание ЛПНП в крови? 5. Как подготовить химическую посуду к исследованию для определения липидов?

ЗАДАЧА №20.
В лабораторию доставлена проба венозной крови на определение общих
липидов.
Задания:
1. Как приготовить сыворотку крови?
2. Какие рекомендации необходимо дать пациенту по подготовке к данному анализу?
3. Как влияет время приема пищи на качество полученной сыворотки?
4. Как подготовить химическую посуду для определения общих липидов?
5. В каких единицах измеряют содержание общих липидов в крови?

ЗАДАЧА № 21.
У больного в положение лѐжа отобрана проба венозной крови для определения содержания калия. Медицинская сестра наложила жгут на 5 минут, похлопала по руке и перед забором забором крови попросила поработать рукой. Сыворотка получилась гемолизированной.
Задания:
1. Найдите ошибки при заборе крови.
2. Укажите возможные причины гемолиза крови в данном случае.
3. Почему в данном случае гемолиз недопустим?
4. В каких биологических материалах определяют содержание калия?
5. Как подготовить посуду, применяемую для исследований на содержание калия?


ЗАДАЧА № 22.
В централизованную биохимическую лабораторию доставлена проба крови для определения активности трансаминаз. Проба транспортировалась в неотапливаемом трамвае при температуре окружающего воздуха -280 С. Полученная сыворотка ярко-розового цвета.
Задания:
1. Охарактеризуйте полученную сыворотку.
2. Можно ли использовать данную сыворотку для определения активности трансаминаз? Почему?
3. Каковы наиболее вероятные причины изменения сыворотки в данном случае?
4. Каковы источники внутрилабораторных ошибок при определении активности трансаминаз?
5. Как рассчитать коэффициент де Ритиса?

ЗАДАЧА №23.
В 18 часов пациенту назначено исследование крови на содержание мочевой
кислоты. На следующий день в 8 часов утра пациент сдал пробу венозной крови на исследование.
Задания:
1. Укажите, достоверен ли будет результат исследования?
2. Как подготовиться больному к исследованию?
3. Какие особенности имеет забор крови для определения мочевой кислоты?
4. Укажите методы определения содержания мочевой кислоты в крови.
5. Для чего в методике определения мочевой кислоты по методу Мюллера-Зейферта используется трихлоруксусная кислота?

ЗАДАЧА № 24.
Пациенту с подозрением на анемию назначено исследование крови на содержание сывороточного железа. На следующий день он сдал кровь на анализ.
Задания:
1. Достоверен ли будет результат исследования?
2. Что должен знать пациент по подготовке к данному исследованию?
3.В чѐм заключаются особенности подготовки и мытья посуды, используемой для определения сывороточного железа?
4. На чѐм основан принцип метода определения железа в крови?
5. Можно ли использовать для определения содержания сывороточного железа плазму?
ЗАДАЧА № 25.
В централизованную биохимическую лабораторию доставлена сыворотка крови для определения концентрации натрия. Сыворотка оказалась гемолизированной.
Задания:
1. Можно ли использовать данный биоматериал для определения концентрации натрия? Обоснуйте ответ.
2. Укажите внутрилабораторные причины гемолиза.
3. Как подготовить пациента к определению концентрации натрия в крови?
4. Что лежит в основе определения содержания натрия методом пламенной фотометрии?
5. В каких биологических жидкостях можно определять содержание натрия?

ЗАДАЧА № 26.
Пациенту назначено определение клиренса креатинина.
Задания:
1. Что такое клиренс веществ?
2. Как проводится определение клиренса креатинина?
3. Какие рекомендации должен получить пациент по подготовке к исследованию?
4. Как проводится определение клиренса креатинина (проба Реберга)?
5. Как проводится оценка почечной фильтрации по пробе Реберга?

ЗАДАЧА №27.
При заборе капиллярной крови для определения содержания глюкозы ребенок очень сильно плакал.
Задания:
1. Может ли стресс повлиять на результат анализа?
2. На какие биохимические показатели может повлиять стресс?
3. Как нужно было поступить медицинскому технику в данном случае?
4. Как обеспечить достоверность результатов определения глюкозы, если сыворотка гемолизирована?
5. Укажите ориентировочные нормы содержания глюкозы в сыворотке крови.

ЗАДАЧА № 28.
При электрофоретическом определении белковых фракций крови на ацетатной пленке обнаружено 6 фракций, с наличием дополнительной фракции между β - и γ -глобулинами.

Задания:
1. Дайте характеристику этого явления.
2. Укажите причины появления дополнительной фракции на электрофореграмме.
3. Перечислите этапы обработки электрофореграмм на ацетатной пленке.
4. Укажите, можно ли определять белковые фракции в плазме крови?
5.В чем преимущество разделения белков плазмы крови методом дискэлектрофореза по сравнению с электрофоретическим разделением белков крови на ацетатной пленке?

ЗАДАЧА № 29.
При внутрилабораторном контроле воспроизводимости результатов вводимой в КДЛ методики определения сорбитолдегидрогеназы на контрольной карте три результата подряд находятся за пределами X+S (среднеквадратическое отклонение).
Задания:
1. Какова воспроизводимость методики в данном случае?
2. Можно ли выдавать результаты анализов в отделения? Как обеспечить лучшую воспроизводимость?
3. Какие материалы используются для контроля качества биохимических
исследований?
4. Какие материалы можно применять для контроля воспроизводимости?
5. Как нужно хранить приготовленные контрольные материалы?

ЗАДАЧА № 30.
В биохимическую лабораторию доставлена проба венозной крови,
стабилизированная антикоагулянтом (гепаринатом лития) для определения содержания калия в крови.
Задания:
1. Каковы особенности доставки биологического материала в лабораторию на определение содержания калия?
2. Почему наблюдаются большие расхождения в результатах определения концентрации калия в сыворотке и в плазме крови?
3. В каких биологических жидкостях можно определять калий?
4. Какой биологический материал является предпочтительным для определения содержания калия в крови?
5. Перечислите методы, применяемые для определения концентрации калия в биологических жидкостях.

ЗАДАЧА № 31.
Медицинский техник определил в сыворотке крови общий белок биуретовым методом. После определения оптической плотности по калибровочному графику он нашел содержание общего белка в крови-110 г/л.
Задания:
1. Можно ли сразу же выписывать бланк анализа? Как должен поступить медицинский техник в данном случае?
2. Как рассчитать приготовление 200 мл 0,2 N раствора гидроксида натрия для приготовления биуретового реактива?
3. Укажите источники внутрилабораторных аналитических ошибок при данном определении.
4. В каких биологических жидкостях определяют содержание общего белка?
5. Охарактеризуйте состояние белкового обмена в данном случае. Назовите наиболее часто встречающиеся причины такого состояния.

ЗАДАЧА № 32.
В централизованную биохимическую лабораторию доставлена липемическая, желтушная сыворотка для определения содержания неорганического фосфора.
Задания:
1. Можно ли использовать данную сыворотку для определения концентрации неорганического фосфора в крови? Обоснуйте ответ.
2. Как подготовиться к анализу?
3. Мешают ли определению неорганического фосфора белки плазмы крови?
4. Чем можно заменить дефицитный эйконоген при определении неорганического фосфора?
5. От чего зависят референтные величины содержания неорганического фосфора в сыворотке крови?

ЗАДАЧА № 33.
После центрифугирования пробы крови, взятой без антикоагулянта,
направленной для определения активности лактатдегидрогеназы, надосадочная жидкость получилась слегка розового цвета.
Задание:
1. Назовите эту жидкость.
2. Можно ли в ней определять активность лактатдегидрогеназы (ЛДГ)?
3. В какой биологической жидкости предпочтительнее определять активность ЛДГ?
4. Перечислите методы определения активности ЛДГ.
5. Назовите методы разделения изоформ ЛДГ.

ЗАДАЧА № 34.
Пациенту назначено определение протромбинового отношения для контроля приема пероральных антикоагулянтов.
При проведении определения протромбинового времени медицинский техник использовала тромбопластин, на флаконе которого указано: титр -13 секунд, МИЧ-1,6.
Задания:
1. Какой биологический материал используется для определения протромбинового времени?
2. Укажите особенности его получения для определения протромбинового отношения.
3. Как правильно измерить время при определении протромбинового отношения?
4. Что такое МИЧ? Для чего он введѐн?
5. Что такое MHO? Как рассчитать MHO?

ЗАДАЧА № 35.
В экстренную лабораторию стационара поступила проба крови больного с предварительным диагнозом: «Острый панкреатит. Алкогольное опьянение». Необходимо определить активность α-амилазы, АлТ, АсТ.
Задания:
1. Достоверны ли будут результаты исследования? Обоснуйте ответ.
2. Как влияет приѐм алкоголя на результаты биохимических исследований?
3. Как хранят субстрат для определения активности АсТ и АлТ?
4. Что такое преаналитический этап лабораторных обследований в биохимической лаборатории?
5. Перечислите аналитические факторы, влияющие на конечный результат биохимических исследований.

ЗАДАЧА № 36.
В экстренную лабораторию поступила проба крови больного острым
панкреатитом для проведения биохимических исследований с пометкой «Кровь взята после приема лекарств».
Задания:
1. Правильно ли дано указание на исследуемом материале?
2. Достоверны ли будут результаты исследований?
3.Как приѐм лекарственных препаратов влияет на результаты биохимических исследований?
4.Укажите общие правила взятия материала для биохимических исследований.
5. Рассчитайте приготовление 2 л физиологического раствора.

ЗАДАЧА № 37.
Медицинский техник участвует во внутрилабораторном контроле качества коагулологических исследований.
Задания:
1. Укажите внутренние источники погрешностей, выявляемых системой
внутрилабораторного контроля качества лабораторных исследований.
2. Что такое систематическая погрешность измерения?
3. Как правильно измерять время при проведении коагулологических исследований?
4. Почему нельзя пользоваться воздушным термостатом при проведении
коагулологических исследований?
5. Можно ли выдавать результаты исследований, если при контроле
воспроизводимости 10 последних результатов на контрольной карте располагаются по одну сторону от линии, соответствующей средней арифметической (X)?

ЗАДАЧА № 38.
Пациенту с обострением хронического панкреатита назначено определение активности ферментов: α-амилазы крови и мочи, липазы крови. Пациент принес для анализа мочу, собранную накануне вечером.
Задания:
1. Можно ли определять активность фермента в моче, собранной накануне вечером?
2. На чѐм основаны принципы амилокластических определений активности α -милазы в крови?
3. Каковы особенности приготовления и хранения рабочего раствора йода для определения активности амилазы по методу Каравея?
4. Для чего используется раствор йода в данном определении?
5. В чѐм заключаются особенности подготовки пациента для определения активности липазы крови?
ЗАДАЧА № 39.
Медицинский техник участвует во внутрилабораторном контроле качества методики определения активности АсТ, определяя правильность измерений.
Задания:
1.Укажите общие внешние факторы погрешностей лабораторных исследований.
2. Что такое случайная погрешность измерения?
3. Укажите внутренние источники ошибок при определении активности АсТ.
4. Какие контрольные материалы используются для контроля правильности?
5. В каких единицах измеряется активность трансаминаз?

ЗАДАЧА № 40.
В биохимическую лабораторию доставлена стабилизированная проба крови для проведения тестов оценки системы гемостаза.
Задания:
1. Как приготовить плазму, бедную тромбоцитами?
2. Как приготовить плазму, богатую тромбоцитами?
3. На чѐм основано антикоагулянтное действие гепарина?
4. Как провести силиконирование посуды?
5. С какой целью проводится силиконирование посуды, используемой для коагулологических исследований?





ЭТАЛОНЫ ОТВЕТОВ СИТУАЦИОННЫХ ЗАДАЧ ПОПМ.03 ПРОВЕДЕНИЕ ЛАБОРАТОРНЫХ БИОХИМИЧЕСКИХ
ИССЛЕДОВАНИЙ

ЗАДАЧА № 1.

1. Признаком гемолиза является розово-красная окраска сыворотки и плазмы. При гемолизе разрушаются клеточные оболочки эритроцитов, что связано с попаданием эритроцитов в гипотонический раствор, или с механическим повреждением оболочки, либо с разрушением клеточных мембран при реакции антиген-антитело.
2. Наиболее частые причины гемолиза:
а) попадание в пробирку с кровью влаги;
б) сильная механическая тряска при транспортировке проб крови;
в) остатки моющих средств и реактивов в пробирке;
г) резкая смена температуры окружающего воздуха;
д) прокол не высохшего пальца;
е) длительное сдавление мягких тканей при взятии крови на анализ.
3. Для большинства лабораторных тестов сыворотка с признаками гемолиза не используется.
4. Гемолиз занижает результаты определения билирубина, завышает активность ферментов: АсТ, АлТ, ЛДГ, КК, КФ, ЩФ, α-амилазы и других, которые содержатся в эритроцитах, завышает концентрацию калия и занижает концентрацию натрия.
5. Необходимо дождаться полною образования сгустка, сгусток отделять тонкой стеклянной палочкой, избегая резких движений, во время центрифугирования пробирку закрывать крышкой.

ЗАДАЧА № 2.

1. Нет, результаты будут не достоверны, так как билирубин является
светочувствительным веществом. Под воздействием прямого солнечного света в течение 1-2 часов содержание билирубина снижается на 50%.
2. На результаты исследования влияет правильность подготовки пациента: завышают результаты физические нагрузки, длительное голодание, употребление моркови, прием алкоголя перед исследованием.
3. На результаты влияют остатки дезинфицирующих, моющих средств и
антикоагулятов в пробирках, которые могут как завысить, так и занизить
результаты. Хранение проб крови на свету и доставка их в лабораторию без заворачивания в темную бумагу занижают результат.
Гемолиз так же мешает определению.
Билирубин в цельной крови не стабилен и позднее отделение сыворотки от сгустка занижает результат.
4. Непрямой (свободный) билирубин определяется по разнице между общим и связанным (прямым) билирубином.
5. Кофеиновый реактив, так же как и другие акселераторы, переводят свободный билирубин в растворимое диссоциированное состояние, в котором он реагирует с диазосмесью.

ЗАДАЧА №3.

1. Нет, результаты будут недостоверны, гак как при комнатной температуре уже через 10 минут после взятия крови концентрация глюкозы начинает снижаться: происходит уменьшение концентрации глюкозы вследствие расходования ее на гликолиз, происходящий в клетках крови, и использования глюкозы бактериальными клетками. Уровень глюкозы снижается и из-за гликозилирования белков крови.
2. Кровь необходимо брать утром, натощак, после 12-14 часового голодания и воздержания от приема алкогольных напитков не менее 24 часов. Пациенту не рекомендуется накануне посещать баню, сауну, голодать, курить, пить кофе, выполнять физические нагрузки.
3. Сыворотка должна быть отделена от сгустка как можно быстрее, но не позднее чем через час после взятия крови. Необходимо исключить гемолиз крови, так как он занижает результат. Высокая температура окружающей среды в лаборатории может завышать результаты.
4. Для определения глюкозы в биологических жидкостях используются 3 группы методов:
а) ферментативные, основанные на гексокпшиной и глюкооксидазной реакциях;
б) редуктометрические, основанные на способности глюкозы восстанавливать соли металлов и другие соединения;
в) методы, основанные на цветных реакциях с продуктами, образующимися при нагревании углеводов с кислотами.
5. Для депротеинирования сыворотки крови обычно используют растворы трихлоруксусной кислоты, а в методике определения глюкооксидазным методом применяют ацетат уранила.

ЗАДАЧА № 4.

1. Активность трансаминаз будет резко снижена, так как при температуре 600С происходит денатурация белков и ферменты теряют свою активность.
2. Ошибки, которые приводят к недостоверным результатам:
а) использование гемолизированной сыворотки;
б) несоблюдение температурного режима;
в) не точное добавление реактивов;
г) не соблюдение экспозиции и времени инкубации.
3. Для диагностики инфаркта миокарда определяют активность КК, КК-МФ, АсТ и АлТ, с подсчетом коэффициента де Ритиса, ЛДГобщ. и ЛДГ1
4. ДФГ применяют в качестве ингибитора трансаминаз, а так же для образования окрашенного соединения с продуктами реакции.
5. Нет, так как при разрушении эритроцитов происходит выброс из них трансаминаз и результат определения активности их в крови завышается.

ЗАДАЧА № 5.

1. Если на контрольной карте хотя бы один результат выходит за пределы X ±3S, тo результаты исследования соответствует контрольным критериям и в этом случае результат не выдается до исправления недостатка в методике.
2. Превышение X ± 3S указывает на увеличение случайных ошибок.
3. Этапы контроля воспроизводимости:
а) приготовление слитой сыворотки;
б) двадцатидневное исследование слитой сыворотки на содержание кальция;
в) статистическая обработка результатов;
г) построение контрольной карты;
д) ежедневное исследование контрольной сыворотки;
с) оценка результатов по критериям.
4. Методы определения кальция:
а) основанные на цветных реакциях (с мурексидом, крезолфталеином, с глиоксальбис-2-оксианилом, с комплексонами, с флурсксоном);
б) аппаратные (пламенная фотометрия, использование инициализаторов и др.).
5. Нет, так как гемолиз сыворотки может как занижать, так и завышать результат определения содержания кальция в крови в зависимости от метода определения и используемого основного реактива.

ЗАДАЧА № 6.

1. Необходимо исключить мышечную нагрузку в течение 3 дней, исключить из диеты вареное мясо, дичь, прием алкоголя, больших количеств аскорбиновой кислоты и аспирина.
Методы определения креатинина: первая группа - основаны на реакции Яффе, в основе которого лежит реакция с пикриновой кислотой, после предварительного осаждения белков;
вторая группа методов - представлена ферментативными методами;
третья группа - аппаратные методы.
3. Потому, что с пикриновой кислотой в реакции Яффе через 30-40 секунд реагируют глюкоза, ацетон, а через 15-20 минут реагируют аскорбиновая кислота, пировиноградная кислота и некоторые другие вещества.
4. От пола, степени развития мускулатуры, возраста.
5. Увеличение креатинина характерно для далеко зашедшего процесса патологии
почек.

ЗАДАЧА № 7.

1. Соответствует, так как у больных сахарным диабетом наряду с гипергликемией отмечается значительно выраженная гиперлинемия,
2. Посуду, используемую для определения общих липидов нужно мыть отдельно. Помимо обработки и стерилизации по приказу N 408 МЗ ее для обезжиривания ополаскивают абсолютным этиловым спиртом, а затем высушивают.
3. После работы остатки биологической жидкости сливаются в отдельный контейнер с крышкой и засыпаются дезинфицирующим средством (хлорной известью) в соотношении 1:2, выдерживаются 1 час, затем сливаются в канализацию.
4. Методы определения общих липидов:
а) гравиметрические;
б) нефелометрические;
в) окислительные;
г) основанные на реакции с суданом черным; д) основанные на цветной реакции с сульфофосфорнованилиновым реактивом.
5. Можно.

ЗАДАЧА № 8.

1. Нет, так как калибровочные графики и калибровочные таблицы строятся строго к определенным приборам.
2. Готовят 2-3 серии стандартных разведении из растворов сравнения I и II соответствующих определенным значениям единиц мутности тимоловой пробы по схеме, прилагаемой к методике, и определяют их оптические плотности. На миллиметровой бумаге на оси ординат равномерно откладывают значения тимоловой пробы, а по оси абсцисс - величины оптической плотности для каждого разведения. Затем наносят среднее значение оптических плотностей каждого разведения в сетку координат и через полученные точки проводят прямую линию.
3. Для паренхиматозной желтухи характерно повышение тимоловой пробы, а при обтурационной желтухе она обычно не повышается.
4. Наиболее часто проводят тимоловую пробу, формоловую, сулемовую, пробу Вельтмана.
5. Изменение осадочных проб основано на изменении соотношения «легких» и «тяжелых» фракций белков, при этом белки крови преципитируют скорее или медленнее, чем в норме.

ЗАДАЧА № 9.

1. Результаты будут недостоверны, так как при попадании плазмы в пробирку с царапинами на стекле активируется фактор контакта, что приводит к гиперкоагуляции и завышению результатов.
2. Для проведения исследования системы гемостаза используются отдельные центрифужные пробирки. Для уменьшения контактной активации гемостаза используются пластиковые или стеклянные силиконированные пробирки. Для силиконирования пробирки заполняют 5% или 10% раствором силикона в толуоле на 5 -10 минут. Силикон сливают, а пробирки затем высушивают при температуре 180-2000 С.
3. Соотношение крови и антикоагулянта обычно 9:1, если гематокрит незначительно отличается от нормального. В других случаях соотношения подбирают по схеме.
4. Цитрат и оксалат натрия проявляют свою антикоагулянтную активность, связывая ионы кальция, и процесс свертывания крови в пробирках неактивируется, так как ионы кальция важный фактор активации свертывания.
5. Нельзя, так как при гемолизе из эритроцитов выходят активаторы факторов свертывания и результаты завышаются.
ЗАДАЧА № 10.

1. Heт, так как при длительном стоянии в пробирках для определения прямого билирубина в реакцию вступает непрямой билирубин.
2. В крови определяется общий билирубин, который представляет собой сумму свободного и связанного билирубина. Свободный билирубин - это комплекс билирубина с альбумином, не дающий с диазосмесью прямой реакции. Связанный билирубин - билирубиндиглюкоронид, дающий с диазосмесью прямую реакцию.
3. При вирусном гепатите В разгар заболевания общий билирубин повышается в основном за счет прямого и непрямого.
4. Так как прямой билирубин реагирует с диазосмесью быстро, т. е. в течение 5 мин, а при стоянии происходит самопроизвольная диссоциация свободного билирубина и он так же вступает в реакцию.
5. Акселераторы используют для ускорения диссоциации свободного билирубина. В качестве акселератора используют кофеин, мочевину, гидроксид натрия, этиленгликоль и другие вещества.

ЗАДАЧА № 11.

1. Нет, так как кровь должна быть максимально быстро доставлена в лабораторию и сыворотка немедленно исследуется во избежание завышения результата из-за выброса кислой фосфатазы из эритроцитов.
2. Пациент должен знать, что за 3 дня до исследования нельзя проводить пальпацию простаты, ректальное исследование, катетеризацию мочевого пузыря. Накануне нельзя принимать алкоголь, активно заниматься физическим упражнениями.
3. Сыворотка крови должна быть как можно быстрее отделена от сгустка и
форменных элементов и исследуется немедленно. При невозможности немедленного анализа сыворотку стабилизируют тиосульфатом натрия (5 мг/мл) или 10% уксусной кислотой (0,02 мг/мл) и хранят 24 часа при комнатной температуре.
4. При определении активности общей и простатической кислой фосфатазы применяют 2 ингибитора – гидроксид натрия, вызывающий снижение ферментативной активности общей кислой фосфатазы, вследствие изменения рН среды на щелочную и тартрат, который ингибирует активность только простатического изофермента кислой фосфатазы.
5. Наибольшее диагностическое значение определение КФ имеет для диагностики заболеваний предстательной железы, активность КФ при них возрастает.

ЗАДАЧА № 12.

1. Гемолиз может вызвать как завышение, так и занижение концентрации общего
белка. В этих случаях при проведении анализа требуется постановка специальных холостых проб, содержащих сыворотку, экстинкция которых вычитается из экстинкции пробы.
2. Кровь берется натощак. Рекомендуется 12-14 часовое голодание. Исключить физические нагрузки, длительное пребывание в положении стоя. 8 день исследования исключить бромсульфофталеиновую пробу.
3. Общий белок в крови можно определять следующими методами:
а) азотометрическим (по Кьельдалю);
б) гравиметрическими;
в) спектрофотометрическими;
г) рефрактометрическими;
д) фотометрическими, основанными па цветных реакциях с биуретовым реактивом и другими реактивами.
4. Принцип: белки реагируют в щелочной среде с сульфатом меди, при этом образуются соединения, окрашенные в фиолетовый цвет.
5. При построении калибровочного графика для определения общего белка готовят ряд разведений с содержанием общего белка от 20 до 100 г/л, по специальной схеме, указанной в методике.
Из каждого разведения берут 0,1 мл раствора, добавляют 5 мл биуретового реактива и через 30 ми-нут фотометрируют, исследование повторяют 3-4 раза. По полученным данным строят калибровочный график, нанося значения оптической плотности проб в сетке координат.

ЗАДАЧА № 13.

1. Сыворотка крови должна быть прозрачная, желтого цвета. Данная сыворотка с липемией, то есть, с большим количеством липидов, главным образом хиломикронов.
2. Данную сыворотку использовать нельзя, так как липиды будут мешать определению, выявляясь в виде дополнительной фракции.
3. Принцип: частицы белка перемещаются в электрическом поле постоянного тока (в щелочной среде - к аноду, в кислой -к катоду) с разной скоростью в зависимости от величины заряда и молекулярной массы. В щелочной среде наиболее быстро перемещаются альбумины, затем α1 -,α2 -, β – и γ - глобулины.
4. Электрофорез на ацетатной пленке имеет ряд преимуществ:
а) четкость разделения фракций из-за однородности пленки;
б) меньшее время электрофореза;
в) легкая отмываемость фона;
г) минимальная абсорбция белком пленки, а значит, высокая точность.
5. Количество выделенных фракций зависиит от поддерживающей среды. Белки сыворотки крови разделяются методом электрофореза на бумаге на 5 фракций: α1 -,α2 -, β – и γ - глобулины и альбумины.
ЗАДАЧА № 14.

1. Да, можно, тик как концентрация мочевины в плазме и сыворотке практически одинаковая.
2. Пища накануне не должна содержать избыток белков, в то же время диета не должна быть низкокалорийной. Кровь берется натощак (после 12 часового голодания). Пациент не должен курить, принимать алкоголь накануне. Обследуемый находится в положении сидя или лежа.
3. Методы определения мочевины:
а) газометрические;
б) ферментативные с последующим определением аммиака или углекислою газа;
в) фотометрические, основанные на реакции мочевины с различными веществами с образованием окрашенных соединений: наиболее распространены методы, основанные на реакции с диацетилмонооксимом.
4. Принцип: мочевина под воздействием уреазы разлагается с образованием аммиака и углекислого газа. Выделившийся аммиак образует с соответствующими реактивами окрашенный продукт. Интенсивность окраски пропорциональна содержанию мочевины.
5. Наиболее часто определение содержания мочевины проводят при заболеваниях почек, так при этом резко снижается выделение мочевины с мочой и концентрация мочевины в крови возрастает. То же самое наблюдается и при уменьшении
почечного кровотока, механической задержке мочи. Уменьшение концентрации мочевины наблюдается при беременности, тяжелых заболеваниях печени, ведущих к нарушению ее синтеза.

ЗАДАЧА № 15.

1. Гемолиз не допускается, так как снижает результаты при использовании глюкооксидазного метода. В случае гемолиза сыворотку депротеинируют, а затем определяют глюкозу в супернатанте.
2. Материалом для определения концентрации глюкозы является капиллярная кровь, венозная кровь, плазма, сыворотка, моча, спинно - мозговая жидкость.
3. В современных клинико-диагностических лабораториях используют следующие методы определения глюкозы:
а) редуктометрические - основанные на способности глюкозы восстанавливать соли металлов и другие соединения;
б) ферментативные - основанные на окислении глюкозы в присутствии гексокиназы или глюкооксидазы;
в) основанные на цветных реакциях глюкозы с различными веществами;
г) аппаратные - с использованием субстратспецифичных электродов.
4. Принцип определения глюкозы: глюкоза в присутствии фермента глюкооксидазы окисляется кислородом воздуха с образованием в ходе реакции перекиси водорода. Количество перекиси водорода определяют либо химическим путем, либо по способности в присутствии пероксидазы окислять диамины с образованием окрашенных соединений.
5. Остатки хромовой смеси могут повлиять на результат, гак как хромовая смесь - сильный окислитель, который может окислить глюкозу до глюконовой кислоты и занизить результат.

ЗАДАЧ А № 16.

1. За 3 дня отменяются инъекции глюкозы, кофеина, адреналина. В течение 3-х дней пациент не должен изменять привычного режима питания и мышечной нагрузки, получая диету, содержащую не менее 150 г углеводов в сутки, без избытка и ограничения жиров. В день, предшествующий проведению теста, последний прием пищи должен быть не позднее 20 часов, нельзя принимать алкоголь. Перед пробой необходимо 30 минут спокойно посидеть. Во время проведения пробы и перед ней нельзя курить. Необходимо следить за эмоциональным и физическим покоем .
2. Начинают не позже 10 часов утра. Пациент - может ходить, но должен быть под наблюдением медицинского техника. В начале проводят забор пробы капиллярной крови на содержание глюкозы строго натощак.
Затем пациент выпивает в течение не более 3-х минут 250 мл теплой кипяченой воды с растворенными в ней 75 г глюкозы. Через 30,60,90,120 мин (допустимо - 60,90,120 минут) проводят повторные взятия крови и определение глюкозы, лучше гексокиназным методом. В конце пробы собирают мочу на наличие глюкозы.
3. ГТТ не проводится, если два раза натощак концентрация глюкозы выше 7,8 ммоль/л или один раз -выше 11,1 ммоль/л., а так же больным после инфаркта миокарда.
4. Гликемическую кривую строят, откладывая по вертикальной оси концентрацию глюкозы в ммоль/л, а на горизонтальной - время н минутах, прошедшее с момента приема глюкозы. Полученные точки соединяют.
5. Гемолиз крови недопустим, так как занижает результат исследования.

ЗАДАЧА № 17.

1. Да, так как умеренный гемолиз не мешает определению.
2. Кровь берется натощак. Рекомендуется 12-14 часовое голодание. Исключить физические нагрузки, длительное пребывание в положении стоя. Исключить алиментарную гиперлипидемию, то есть необходимо ограничить прием жиров.
3. Принципы осадочных проб основываются на изменениях, наступающих и коллоидной устойчивости белков сыворотки при диспротеинемиях. Изменение устойчивости белков плазмы в растворе связано с нарушением соотношения альбуминов и глобулинов, а также легких (α1 -,α2 – глобулины) и тяжелых (β- и γ - глобулины) фракций глобулинов. При этом, под влиянием физических и химических факторов, в норме не вызывающих осаждения белкой, белки преципитируют с помутнением или образованием хлопьев.
4. Появление белков острой фазы ведет к диспротеинемии, а, следовательно, и к изменению устойчивости коллоидного раствора белка сыворотки крови.
5. Особенностью построения калибровочного графика для определения тимоловой пробы является то, что готовится ряд разведений (смешиванием растворов сравнения 1 и II) с помутнением, соответствующим 5-20 единицам помутнения (ед. S-H). К ним не добавляется тимоловый реактив, а через 30 минут после интенсивного перемешивания пробы фотометрируют против дистиллированной воды. По оптическим плотностям калибровочных растворов строят калибровочный
график.
ЗАДАЧА № 18.

1. Кровь берется строго натощак, после 12-14 часового голодания. Исключить из диеты сахар. Необходимо воздержание от приема алкоголя в течение 24 часов. За неделю до взятия крови из диеты следует исключить жиры, за 2 недели препараты снижающие уровень липидов. Больной не должен подвергаться стрессам.
2. Перед взятием крови больной должен посидеть в покое, так как концентрация холестерина уменьшается при изменении положения тела
3. Самым точным методом определения считается ферментативный, основанный на действии холестериноксидазы, в результате чего образуются холестенон и перекись водорода. Менее точны методы, основанные на цветных реакциях на холестерин. Широкое распространение получили реакции Либермана-Бурхарда и Златкиса-Зака.
Первый метод основан на том, что в сильнокислой среде в присутствии уксусного ангидрида от холестерина отщепляется вода и образуется окрашенное в зеленовато-синий цвет соединение. Метод Златкиса-Зака основан на том, что при окислении холестерина хлорным железом в концентрированной серной кислоте развивается красно-фиолетовое окрашивание. Эта реакция в 4-5 раз чувствительнее, чем реакция Либермана-Бурхарда, но менее специфична, поскольку широкий круг
веществ (витамин А), дает такое же окрашивание, как и холестерин.
4. Половые гормоны синтезируются из холестерина, поэтому уровень холестерина зависит от активности синтеза их. Поэтому при снижении синтеза эстрогенов и других половых гормонов содержание холестерина в крови возрастает и наоборот.
5. Определение холестерина ведут в отдельной посуде. После обработки и обеззараживания и стерилизации согласно приказу № 408 МЗ СССР еѐ ополаскивают абсолютным этанолом и высушивают.

ЗАДАЧА № 19.

1. Венозную кровь набирают в стеклянную несиликонированную или пластиковую пробирку. Ставят на 15 минут в термостат при температуре 370С или выдерживают при комнатной температуре (15-250 С) до полного образования сгустка. Затем обводят сгусток крови по стенке пробирки пастеровской пипеткой или тонкой стеклянной палочкой для отделения сгустка. Жидкую часть сливают и центрифугируют при 1500 оборотов в минуту 10-15 минут (или центрифугируют в этой же пробирке). Образовавшийся супернатант быстро отсасывают пастеровской пипеткой в чистую сухую центрифужную пробирку.
2. Забор крови должен быть проведен строго натощак после 12 часового голодания. Накануне нельзя заниматься физическими упражнениями, принимать алкоголь, сахар. Перед забором крови необходимо немного посидеть.
3. Типирование классов липопротеидов проводится несколькими методами:
а) дискэлектрофорез;
б) электрофорез на ацетатной пленке;
в) ульфацентрифугирование;
г) гравиметрический;
д) нефелометрические.
4. Большая часть холестерина в крови содержится в липопротеидах низкой плотности. Между их концентрацией в крови и концентрацией холестерина в ней существует прямая зависимость: при повышении уровня ЛПНП повышается и уровень холестерина и наоборот.
5. Определение липидов ведут в отдельной посуде. После обработки, обеззараживания и стерилизации согласно приказу № 408 МЗ СССР еѐ ополаскивают абсолютным этанолом и высушивают.
ЗАДАЧА № 20.

1. Свернувшуюся в пробирке кровь аккуратно обводят стеклянной палочкой, отделяя от стенок пробирки. Для получения сыворотки кровь центрифугируют при 1500 оборотов в минуту в течение 10-15 минут. После центрифугирования сыворотку следует быстро отделить от сгустка и форменных элементов крови.
2. Кровь берется у пациента натощак после 12-14 часового голодания. Накануне исключается прием алкоголя и богатой жирами и углеводами пищи.
3. Нарушение рекомендаций по приему пищи приводит к тому, что приготовленная сыворотка приобретает мутность, то есть становится хилѐзной. Хилѐзность завышает результаты анализов.
4. При определении общих липидов посуду следует обезжиривать. Для этого посуда ополаскивается абсолютным спиртом.
5. В системе СИ количество общих липидов выражается в г/л.

ЗАДАЧА №21.

1. Необходимо отбирать в положении сидя, нельзя накладывать жгут, работать рукой, так как пережатие сосудов более, чем на 1 минуту, и работа рукой вызывают повышение концентрации калия.
2. В данном случае похлопывание по руке и длительное наложение жгута.
3. Калий - внутриклеточный элемент, поэтому разрушение эритроцитов при гемолизе приводит к увеличению концентрации его в сыворотке.
4. В сыворотке, плазме, эритроцитах, цельной крови, суточной моче, слюне, спинномозговой жидкости. 5. Тщательно полоскать посуду, бидистиллированной водой, так как загрязнение лабораторной посуды моющими и дезинфицирующими средствами ведет к завышению результата, так как мыла-это каленные и кальциевые соли жирных кислот.

ЗАДАЧА .№ 22.

1. Сыворотка имеет видимые признаки гемолиза.
2. Данную сыворотку использовать для определения активности трансаминаз нельзя,
так как даже следы гемолиза влияют на результат исследования, завышая результат в связи с дополнительным выбросом ферментов из эритроцитов.
3. Наиболее вероятные причины гемолиза в данном случае:
а) сильная механическая тряска при транспортировке в трамвае;
б) резкая смена температуры окружающего воздуха при доставке с улицы в лабораторию.
4. Источниками ошибок при определении активности трансаминаз являются:
а) нарушение соотношения буферного раствора, субстратов и сыворотки;
6) не оптимальная рН инкубационной смеси;
в) не соблюдение оптимальной температуры (+370 С) во время инкубации;
г) использование просроченных наборов реактивов для определения;
д) неправильное хранение субстратов.
5. Коэффициент де Ритиса - это отношение активности аспартатаминотрансферазы (АсТ) к активности аланинаминотрансферазы (АлТ). У здорового человека он равен 1,33. При болезнях печени снижается, а при болезнях сердца - увеличивается.

ЗАДАЧ А №23.

1. Нет, так как подготовка пациента к исследованию должна длится не менее трѐх дней.
2. В течение трех суток до исследования пища не должна содержать много белков и пуринов. Накануне и перед забором крови должны быть исключены физические упражнения, воздействие солнечного и ионизирующею излучения, прием алкоголя, кофе. 3. При заборе венозной крови наложение жгута должно быть не больше, чем на 30 секунд, а в качестве дезинфицирующего средства должен использоваться 70% водный раствор изопропанола, а не 70% этанол, использование которого завышает результат.
4. Методы определения мочевой кислоты в крови:
а) ферментативный, основанный на расщеплении мочевой кислоты уриказой;
б) прямые оптические спектрофотометрические методы;
в) основанные на способности мочевой кислоты восстанавливать фосфорно-вольфрамовый реактив с образованием продуктов, окрашенных в синий цвет.
5. Трихлоруксусная кислота используется для осаждения белков крови, мешающих определению мочевой кислоты. 4
ЗАДАЧА № 24.

1. Нет, так как для обеспечения достоверных результатов необходима подготовка не менее, чем в течение трех дней.
2. В течение трех дней из диеты исключаются печень, почки, сердце, фасоль, продукты из ржи, сои, проса, проросших зерен пшеницы. Исключают прием аспирина, аскорбиновой кислоты. Накануне исключают прием алкоголя и физическую активность.
3. Посуда, используемая для определения железа, должна быть отдельной. Посуду рекомендуется промывать 1% раствором ЭДТА или замачивать на ночь в растворе трилона Б с аммиаком (1 : I) с последующим промыванием 5 N соляной кислотой и ополаскиванием деминерализированной или бидистиллированной водой.
4. Методы определения железа в основным основаны на цветной реакции с
батофенантролином (после осаждения белков крови) с образованием окрашенного соединения.
5. Плазму использовать для определения железа нельзя, так как применяемые антикоагулянты могут завысить (гепарин и его соли) или занизить (оксалат натрия, цитрат натрия, ЭДТА) результаты.

ЗАДАЧА № 25.

1. Гемолизированную сыворотку для определения натрия использовать нельзя, так как результаты будут занижены вследствие разбавления сыворотки внутриклеточной жидкостью, содержащей мало натрия.
2. Внутрилабораторные причины гемолиза:
а) слишком низкая или слишком высокая температура воздуха в помещении лаборатории;
б) механическая тряска пробирки с кровью;
в) раннее отделение сгустка крови;
г) грубое отделение сгустка крови с помощью толстой стеклянной палочки.
3. За 3 дня до анализа из рациона исключают соль, колбасы, ветчину, сыр. Исключают физические нагрузки и прием алкоголя не менее, чем на 24 часа. Кровь берут натощак, после 12-ти часового голодания.
4. Метод основан на способности атомов возбуждаться и излучать лучи света определенной длины, которые определяются фотометрически.
5. Натрий определяют в плазме, сыворотке, моче, спинно - мозговой жидкости, поте и слюне.
ЗАДАЧА №26.

1. Клиренс - коэффициент очищения, показывающий какой объем плазмы очищается почками от данного вещества в 1 минуту.
2. Для определения клиренса креатинина определяют содержание креатинина в моче и в крови, одновременно определяя минутный диурез.
3. Подготовка больного к определению клиренса креатинина:
а) за 3 дня исключить физические нагрузки, упражнения;
б) диета в течение 3-х дней не должна содержать вареного мяса, чая, кофе;
в) в течение 3-х дней, предшествующих пробе, не проводят рентгеноконтрастных исследований;
г) за 3 дня исключить прием больших количеств аскорбиновой кислоты, парацетомола, аспирина, анаболических стероидов, тироксина, АКТГ, кортизола и некоторых других лекарств.
4. Проведение пробы Реберга: исследуемый натощак выпивает 400 мл слабого чая и мочится. Эту порцию мочи не исследуют, но замечают время мочеиспускания. Затем собирают мочу, выделенную в течение 1-2 часов, и измеряют ее объем. В середине этого интервала проводят забор венозной крови. Проводят определение концентрации креатинина в моче и крови. По объему выделенной мочи устанавливают минутный диурез и проводят расчеты.
5. Так как креатинин не реабсорбируется и не секретируется в почках, по клиренсу судят о величине почечной клубочковой фильтрации в мл. При заболевании почек она снижается.

ЗАДАЧА № 27.

1. Психические нагрузки, стресс значительно изменяют содержание глюкозы в крови через "встряску" гормонов. При стрессе выделяются адреналин, повышающий уровень глюкозы в крови и меняющий концентрацию других компонентов крови.
2. Под влиянием стресса изменяется содержание фибриногена, альбуминов, холестерина, свободных жирных кислот и др.
3. Необходимо было успокоить ребенка, вывести из лаборатории, дать отдохнуть 30 минут, потом повторить попытку забора крови. При невозможности избежать стресса - предложить прийти послезавтра.
4. Определение нужно проводить глюкооксидазным методом. Провести
депротеинирование сыворотки добавлением депротеинирующих веществ, лучше ацетата уранила, и определить содержание глюкозы в супернатанте.
5. Нормы зависят от методики определения, обычно они в пределах 3,3 – 5,55 ммоль/л.

ЗАДАЧА № 28.

1. Это М-градиент, названный так по первой букве миеломной болезни - заболевания, при котором он чаще всего обнаруживается.
2. М-градиент связан с появлением в крови парапротеинов - патологических белков, по своим физико-химическим свойствам сходных с иммуноглобулинами, но не проявляющих антительной активности.
3. Этапы обработки фореграмм на ацетатной пленке:
а) высушивание на воздухе;
б) фиксация при температуре 100° С;
в) окрашивание в растворе красителя;
г) отмывание красителя;
д) высушивание на воздухе;
е) просветление;
ж) измерение на денситометре и расчет.
4. Плазма крови не используется для определения белковых фракций из-за присутствия фибриногена, дающего пик в области γ-глобулинов и могущего замаскировать М-градиент.
5. При дискэлектрофорезе белки плазмы крови можно разделить на 30 фракций, а не на 5, как при электрофорезе на ацетатной пленке.

ЗАДАЧА № 29.

1. Воспроизводимость анализа приемлемая.
2. Результаты не отвечают контрольным правилам Вестгарда, поэтому выдавать такие анализы в клинические отделения можно, но необходимо тщательно проверить стандартные растворы и работу фотоколориметра.
3. При внутрилабораторном контроле качества биохимических исследований используются следующие контрольные материалы:
а) контрольные материалы промышленного изготовления с известным
значением контролируемых параметров;
б) контрольные материалы промышленного производства с не известными значениями контролируемых параметров;
в) контрольные материалы, изготовленные в лаборатории из остатков образцов пациентов - слитые сыворотки, моча, плазма.
4. Для контроля воспроизводимости результатов можно использовать все виды контрольных материалов,
5. После растворения и перемешивания контрольного материала его разливают во флаконы с герметичными крышками в объеме, достаточном дли исследования в течении одного дня (не менее 0,5 мл) и замораживают при - 20° С, размораживая по 1 флакону в день при комнатой температуре, не допуская повторного замораживания.
ЗАДАЧА № 30.

1. Кровь для определения калия в лабораторию доставляется немедленно, так как калий способен выходить через неповрежденные эритроциты, завышая результаты.
2. Высокая концентрация калия в сыворотке получается вследствие лизиса клеток крови (лейкоцитов, тромбоцитов, эритроцитов), при образовании сгустка крови, так же содержание калия в клетках во много раз больше, чем в плазме. Доставляется кровь в лабораторию немедленно!
3. Калий определяют в сыворотке, плазме, цельной крови, эритроцитарной массе, моче, спинно - мозговой жидкости, слюне.
4. Наиболее предпочтительным биологическим материалом является плазма, в которой калий наиболее стабилен.
5. Основные методы определения концентрации калия в биологических жидкостях:
а) химические (колориметрические, гравиметрические и др.);
б) пламенная фотометрия;
в) атомно-абсорбционная фотометрия;
г) с помощью ионоселективных электродов и др.
ЗАДАЧА № 31.

1. Нельзя, при концентрации общего белка в крови более 100 г/л необходимо сыворотку развести физиологическим раствором в 2-4 раза, повторить определение и полученный результат умножить на величину разведения.
2. Расчет массы NaOH (m), необходимой для приготовления проводится по формуле:


3. К источникам аналитических ошибок при данном определении относятся:
а) вспенивание при внесении сыворотки;
б) несоблюдение времени экспозиции;
в) экспозиция на свету;
г) использование просроченных реактивов;
д) не разведение сыворотки для повторного исследования;
е) неправильное построение калибровочного графика.
4. Содержание общего белка определяют в сыворотке, плазме, моче, ликворе, дуоденальном содержимом, выпотных жидкостях.
5. Наблюдается гиперпротеинемия, наиболее часто она развивается при
гипериммуноглобулинемии и парапротеинемии.

ЗАДАЧА № 32.

1. Нет, так как липемия и желтушность искажают результаты определения фосфора,
2. За три дня до забора биологического материала для исследования необходимо исключить из рациона продукты, которые могут вести к завышению результатов (молоко, молочные продукты, мясо, рыба, чечевица, соя, овсяные хлопья, мука грубого помола). Накануне исключить физические нагрузки и прием алкоголя; кровь берется после 12-14 часового голодания.
3. Определению неорганического фосфора мешают белки крови, полому в ходе его определения проводят депротеинирование хлорной или трихлоруксусной кислотой.
4. Эйконоген можно заменить свежеприготовленным раствором аскорбиновой кислоты в соляной кислоте.
5. Референтные величины зависят главным образом от возраста, кроме того, имеет значение пол.

ЗАДАЧА № 33.

1. Сыворотка с незначительным гемолизом.
2. Нет, так как даже незначительный гемолиз вызывает завышение результата ЛДГ в 160 раз вследствие более высокой активности ЛДГ в эритроцитах и выброса ее из них при их разрушении.
3. Плазма является предпочтительной биологической жидкостью, так как клетки крови в ней более стабилизированы и изменение ЛДГ при хранении незначительно.
4. Мочевину используют для определении изоформ ЛДГ, так как разные
изоферменты ЛДГ по разному ингибируются мочевиной. Наиболее
мочевинстабильные фракции ЛДГ1 и ЛДГ2, так называемые, «сердечные» изоферменты ЛДГ.
5. Методы разделения изоформ ЛДГ: электрофоретическое и по отношению к ингибиторам (мочевине) и действию высокой температуры.

ЗАДАЧА № 34.

1. Плазма. Нельзя использовать в качестве антикоагулянта оксалата натрия.
2. Особенностью является точное соотношение количества крови и антикоагулянта:1 : 9 является критическим. Если объем антикоагулянта не соответствует высокому значению гематокрита, протромбиновое время увеличивается. Кровь до центрифугирования должна храниться в ледяной бане.
3. Правила измерения протромбинового времени следующие: запуск секундомера левой рукой должен быть скоординирован с прибавлением хлористого кальция или плазмы, а остановка (левой рукой)- с появлением нитей фибрина или сетки на дне пробирки.
4. Международный индекс чувствительности. Он введен для стандартизации и сравнимости результатов исследований, так как используют разные виды и типы тромбопластина.
МИЧ - это отношение активности животного тромбопластина к активности тромбопластина человеческого.
5. МНО – международное нормализованное отношение, рассчитывают по формуле:





ЗАДАЧА № 35.

1. Нет, так как алкоголь увеличиваем активность α-амилазы.
2. Прием алкоголя увеличивает активность трансаминаз, α-амилазы, γ -ГТП, изменяет содержание ТАГ, холестерина, альбумина, хиломикронов, глюкозы, мочевой кислоты.
3. Субстрат нужно хранить в холодильных камерах в пенициллиновых флаконах, так как допускается только однократное размораживание субстрата.
4. Преаналитический этап объединяет комплекс процессов перед собственно лабораторным анализом, который состоит из:
а) подготовки обследуемых к анализу;
б) получения биологической жидкости;
в) транспортировки биологической жидкости в лабораторию;
г) подготовки и получения биологической жидкости, из которой непосредственно будет взята проба для проведения анализа.
5. Выделяют 4 группы факторов, влияющих на конечный результат исследования:
а) подготовка пробы;
б) качество используемых реактивов;
в) подготовка и построение калибровочного графика;
г) процесс измерения пробы.

ЗАДАЧА № 36.

1. Нет, неправильно, так как в данном случае необходимо указать названия лекарства, дозу и время приема.
2. Результаты будут недостоверны.
3.Лекарства существенно влияют на результаты лабораторных исследований, так как связываются с транспортными белками, влияют на метаболизм в печени и почках, резорбцию и всасывание питательных веществ в кишечнике и влияют на аналитический этап определения.
4. Общие правила включают:
а) забор строго натощак;
б) последний прием пищи за 12 часов до взятия проб;
в) время взятия с 7 до 9 часов утра;
г) исключение алкоголя не менее, чем за 24 часа до взятия биологической жидкости;
д) забор проб до принятия лекарств;
е) забор проб до проведения диагностических и лечебных процедур;
ж) исключить физическую и мышечную нагрузку на 3 дня; з) сдавление сосудов жгутом не более 1 минуты;
и) обследуемый должен находится в покое, сидеть или лежать не менее 5 минут до забора.
5. Плотность физиологического раствора равна плотности воды и объем равен массе.


ЗАДАЧА № 37.

1. К внутренним факторам погрешностей относят несоблюдение условий,
установленных методикой: время инкубации, температура, объем реактивов, правила приготовления и хранения реактивов.
2. Это составляющая погрешности измерения, остающаяся постоянной или закономерно изменяющаяся при повторных измерениях одной и той же величины.
3. Запуск секундомера должен быть скоординирован с приливанием хлорида кальция или плазмы, а затем остановка - с появлением нитей фибрина (сетки).
Нужно осторожно наклонять пробирку, так как поломка фибриновой сетки может пролонгировать время свертывания.
4. Если использовать сухое тепло, то время инкубации не обеспечит достаточный прогрев, так как теплопроводность воздуха в 28 раз ниже теплоемкости воды.
5. Нет, так как результат соответствует контрольным признакам Вестгарда и до исправления погрешностей результаты анализов не выдаются.

ЗАДАЧА № 38.

1. Нет, активность α-амилазы определяют в свежесобранной моче, так как при стоянии мочи активность α-амилазы в ней падает.
2. Принципы амилокластических методов определения активности α-амилазы основаны на определении остатков нерасщепленного крахмала по степени интенсивности его окраски с йодом.
3. Рабочий 0,01 N раствор йода готовят из 0,1N основного раствора йода, который готовится из фиксанала.
Если рабочий раствор йода готовится с добавлением фтористого калия, он устойчив и хранится в холодильнике в темной посуде в течение 2-х месяцев, без добавления фтористого калия рабочий раствор готовится ежедневно.
4. Раствор йода используется для образования цветного комплекса с крахмалом и для остановки ферментативной реакции, катализируемой α-амилазой.
5. При определении активности липазы кровь берется натощак в положении сидя или лежа. Недопустимо курение и прием алкоголя накануне, так как эти факторы завышают активность фермента.

ЗАДАЧА № 39.

1. К внешним факторам погрешности относятся принципы аналитического метода, качество приборов, реактивов, калибровочных средств.
2. Это составляющая погрешности измерения, изменяющая случайным образом при повторных измерениях одной и той же величины.
3. К внутренним источникам ошибок при определении трансаминаз относятся:
а) несоблюдение времени, температуры и объемов приливания реактивов;
б) нарушение привил приготовления и хранения реактивов;
в) отсутствие замораживания малых объемов замораживания субстратов;
г) использование реактивов с просроченным сроком годности;
д) несоблюдение этапов исследования, особенно задержка с определением оптической плотности.
4. Для контроля правильности результатов анализа используют контрольные сыворотки промышленного производства с известными значениями параметров, которых указываются в паспорте материала (инструкции).
5. Единицы изменения активности трансаминаз: катал (моль/с/л), мкмоль/л.

ЗАДАЧА № 40.

1. Стабилизированную кровь центрифугируют при 3000-4000 об/мин. в течение 15-20 минут, собирают спернатант. Бестромбоцитарную плазму отсасывают стеклянными силиконовыми или пластиковыми пипетками в стеклянные силиконированные пробирки. До исседования показателей свертывания и фибринолиза их хранят в ледяной бане. Время проведенимя анализа в течение 1-3 часа после взятия крови.
2. Для приготовления плазмы, богатой тромбоцитами, стабилизированную кровь центрифугируют при 1000-1500 об/мин, затем собирают супернатант.
3. Гепарин образует комплекс с антитромбином III в десятки раз усиливая его антикоагулянтную активность, поэтому кровь самопроизвольно не свертывается.
4. Силиконирование проводится с целью активации факторов свертывания или контакте со стеклом. Опасность активации возрастает при наличии шероховатостей, царапин на стекле.
5. Сухие чистые пробирки, пипетки и так далее заполняют с помощью шприца 5% или 10% раствором дихлордиметилсилана (силикон) в толуоле на 5-10 минут.
Силикон сливают, посуду высушивают при температуре 180-2000С. Однажды покрытую силиконом посуду используют всегда как силиконированную, подвергая повторной обработке после каждого проведенного исследования.
ЛИТЕРАТУРА
Основные источники:
Полотнянко Л.И. Клиническая химия: учебное пособие/Л.И. Полотнянко- М. ВЛАДОС-ПРЕСС,2009.-343с.
Биологическая химия: учебник/В.К.Кухта, Т.С. Морозкина, Э.И.Олецкий, А.Д.Таганович; под ред. А.Д.Тагановича. – Минск:Асар,М:Издательство БИНОМ,2009.-688с.
Пустовалова Л.М. Основы биохимии для медицинских колледжей /Серия «Медицина для вас»./ Л.М.Пустовалова. - Ростов-на-Дону: Феникс, 2013.-448с.
Клиническая интерпретация лабораторных исследований /Под ред. А.Б. Белевитина, С.Г. Щербакова. - Санкт-Петербург: ЭЛЬБИ-СПб, 2014.-384 с.
Полотнянко Л.И Контроль качества лабораторных исследований: учебное пособие для студентов сред. Мед.и фармацевт. Образоват. учреждений/ Л.И. Полотнянко – М.; ВЛАДОС-ПРЕСС, 2014.-188 с.
Дополнительные источники:
Березов Т.Т. Биологическая химия: Учебник для вузов. / Т.Т. Березов Б.Ф. Коровкин - М.: Медицина, 2009. – 528 с.
Бышевский А. Ш. Биохимия для врача. / А. Ш. Бышевский, О.А.Терсенов – Екатеринбург: Уральский рабочий, 2009. – 384 с.
Клиническая биохимия: учебное пособие. /Под ред.В.А. Ткачука, М.: ГЭОТАР-Медиа, 2009. – 264 с.
Комаров Ф.И. Биохимические исследования в клинике. /Ф.И. Комаров, Б.Ф. Коровкин, В.В. Меньшиков – Элиста: АПП Джингар, 2010. – 250 с.
Марри Р. Биохимия человека: в 2-х томах. / Р. Марри, Д. Греннер, П. Мейес, В. Родуэлл – М.: Мир, 2011. – 384 с.
Медицинские лабораторные технологии и диагностика: Справочник. Медицинские лабораторные технологии. /Под ред. А.И. Карпищенко, Санкт-Петербург: Интермедика, 2012. – 408 с.
Меньшиков В.В. Контроль качества клинических лабораторных исследований / В.В. Меньщиков, Е.Н. Гаранина. – М.: Лабинформ, 2011 – 152 с.
Журнал. Справочник заведующего КДЛ – Издатель: ЗАО «МЦФЭР»
Интернет ресурсы:
www.webmedinfo.ru - медицинский образовательный портал. Библиотека медицинской литературы, программное обеспечение.
http://www.labnbo.narod.ru Сайт лаборатории наследственных болезней обмена содержит информацию о лабораторной диагностике редких наследственных заболеваний, их клинических проявлениях и возможностях лечения.
http://www.medlab.scn.ru - Онлайн журнал для специалистов, нормативные документы, методические рекомендации, эксперт-клуб, выставка лабораторных фирм, форум, полезная информация о лабораторных анализах.

Приложенные файлы

  • docx file32
    Размер файла: 120 kB Загрузок: 10

Добавить комментарий