Рабочая тетрад по епизоотологии

Министерство образования, науки и молодёжи Республики Крым
ОП НУБиПУ «Прибрежненский аграрный колледж»




Утверждаю
Зам. директора по УР
________ А.Н. Хаирова
«__»__________ 2014 г.






Рабочая тетрадь
для выполнения ЛПР по дисциплине
Эпизоотология

для студентов очной формы обучения
специальности 36.02.01 Ветеринария


























с. Прибрежное, 2014 г.


Разработчик: Джигова Л.А. – преподаватель ветеринарных дисциплин,
высшей категории


Рецензент: Хаирова А.Н. - преподаватель ветеринарных дисциплин, высшей
категории.






Аннотация
Рабочая тетрадь составлена согласно программы МДК 02.05 профессионального модуля 02 Участие в диагностике и лечении заболеваний сельскохозяйственных животных в соответствии с требованиям ФГОС по специальности 36.02.01 Ветеринария.





Рассмотрено и одобрено на заседании цикловой комиссии ветеринарно – технологических дисциплин от «___»_______ 2014 г.
Председатель комиссии _________ Н.В. Бацунова























Лабораторная работа № 1

Тема: Ознакомление с работой в лаборатории. Изготовление препаратов из органов и мазков из непатологических бактериальных культур.

Цель занятия: Изучить методику изготовления мазков из культур микробов и мазков- отпечатков отпечатков. Технику безопасности при работе с инфекционным материа-
лом и больными животными.

Литература: И.А.Бакулов. Практикум по эпизоотологии с микробиологией, с. 3-20.

Задание № 1. Изучить технику безопасности при работе с инфекционным материалом и больными животными.

Задание № 2. Изучить устройство микроскопа.


Методика выполнения:
Задание №1.
При работе с патологическим материалом и больными животными внимание ветеринарного специалиста должно быть сосредоточенно на двух основных моментах: предупредить заражение людей и не допустить распространения возбудителя инфекции. Существуют инфекционные болезни животных, которыми может заразиться человек (зооанотропонозы): сибирская язва, туберкулез, бруцеллез, туляремия, Ку-лихорадка, лептоспироз, листериоз, мелиоидоз, бешенство, болезнь Ауески, ящур, дерматомикозы (трихофития, микроспория), сап, сальмонеллезы, эктима, чума верблюдов (зоантропонозная чума), рожа свиней, орнитоз. Заражение человека этими болезнями может произойти при: клиническом осмотре животных и оказании им лечебной помощи; вскрытии трупов и взятии патологического материала для лабораторного исследования; проведения прививок и диагностических исследований; работе с патологическим материалом лаборатории; соприкосновении с необеззараженным сырьем животного происхождения (кожа, шерсть и т.п.) переработке мясных и молочных продуктов; употреблении в пищу инфицированных продуктов животного происхождения. В организм человека патогенные микробы проникают через кожу при нарушении ее целости, главным образом рук, а также через слизистые оболочки рта, носовой полости, дыхательных путей, глаз и пищеварительного тракта.
Чтобы предохранить себя и других от заражения инфекционной болезнью и не допустить ее распространения, нужно соблюдать следующие меры предосторожности:
люди, допускаемые к работе с патологическим материалом и больными животными, должны быть тщательно проинструктированы;
все работы с больными животными и патологическим материалом выполняют только в защитной одежде, включающей халат (с завязками на спине и рукавах), колпак или косынку, при необходимости – нарукавники, передники, резиновые перчатки, резиновые сапоги, очки и защитные марлевые маски. Людей с повреждениями на руках к этой работе, как правило, не допускают. При необходимости разрешают работать только в резиновых перчатках, раны на руках смазывают настойкой йода и затем коллодием. Перед надеванием проверяют целость резиновых перчаток;
оборудование лаборатории и рабочего места должны обеспечивать высокую производительность труда и его безопасность;
при работе с патологическим материалом нельзя курить, разговаривать, касаться лица руками, сморкаться, поправлять волосы, отвлекаться от работы. Следует избегать лишних передвижений. В лаборатории запрещается хранить и принимать пищу;
руки после работы погружают в сосуд с дезинфицирующей жидкостью (2%-ный раствор фенола) на 1 – 2 мин, затем тщательно моют водой с мылом;
использованные в работе пипетки, предметные и покровные стекла, куски ваты и т.п. тотчас помещают в сосуд с дезинфицирующей жидкостью (5%-ный раствор фенола; 3%-ный раствор лизола или креолина). Металлические предметы, бывшие в контакте с патологическим материалом, немедленно обеззараживают прокаливанием на пламени. Инструменты (ножницы, скальпели, пинцеты и др.) после употребления кипятят в стерилизаторе или кладут в закрытый сосуд для последующего автоклавирования. Если патологический материал попал на окружающие предметы, необходимо немедленно провести тщательную дезинфекцию, залив это место дезинфицирующим раствором, а затем, если можно, прожечь данное место с помощью тампона, смоченного спиртом;
весь патологический материал (культуры микробов, трупы животных и т.п.), не подлежащий дальнейшему исследованию, обеззараживают (автоклавируют, сжигают). Место работы с этим материалом должно быть тщательно продезинфицировано и очищено. Допускается только влажная уборка помещений. Особое внимание уделяют удалению пыли с предметов, находящихся в лаборатории. Для обеззараживания комнат, где работают с патологическим материалом, применяют бактерицидные лампы.
Меры против заражения при попадании патологического материала в организм человека: а) при ранениях инфицированным инструментом или при покусе животным не следует торопиться с остановкой кровотечения. Рану нужно прожечь настойкой йода и наложить 40-60%-ную спиртовую повязку; б) при попадании патологического материала в рот его немедленно выплевывают в чашку с дезинфицирующей жидкостью, а рот в течение нескольких минут прополаскивают слабым раствором йода (3 – 5 капель настойки йода на стакан воды) или перманганата калия; в) если патологический материал попал в глаз, его нельзя тереть; следует промыть глаз слабым раствором йода или перманганата калия.
Правила обращения с больными инфекционными болезнями животных. Ветеринарный специалист соприкасается с больными животными во время их исследования (при постановке диагноза), при оказании лечебной помощи, убое животных, вскрытии трупов, проведении эпизоотических мероприятий. Любая работа с больными и в особенности с подозрительными по заболеванию заразными болезнями животными проводится только в защитной одежде.
Исследование больного животного слагается из предварительного ознакомления, включающего регистрацию его , изучение документов и сбор анамнестических, в том числе эпизоотологических, данных, и собственно исследование, которое, в свою очередь, делится на общее исследование (внешний осмотр, исследование кожного покрова и видимых слизистых оболочек и лимфатических узлов, термометрия) и специальное исследование (исследование отдельных систем и органов). При необходимости берут кровь и другие материалы для лабораторного исследования. При исследовании больных и подозрительных по заболеванию животных необходимы чрезвычайная осторожность и продуманность действий. Прежде чем вплотную приступить к этому, надо собрать по возможности полный анамнез, провести предварительное наблюдение за животным и беглый клинический осмотр. Например, если кажется, что собака подавилась костью, прежде чем исследовать глотку, надо тщательно расспросить хозяина о поведении животного в последние дни, характере кормления, о возможных контактах с другими животными, особенно собаками, выяснить нет ли подобных признаков у собак или кошек, принадлежащим соседям. И только после всего этого, соблюдая все меры предосторожности, можно начинать исследовать животное (возможно бешенство!).
Осторожность нужно соблюдать и при оказании больным животным лечебной помощи (при отделении последа или родовспоможении можно заразиться бруцеллезом; ошибочное вскрытие сибиреязвенного карбункула повлечет за собой рассеивание возбудителя болезни и возможность заражения человека). Место, где проводилась работа с больным животным, дезинфицируют.



Задание № 2.
М и к р о с к о п и е г о у с т р о й с т в о. Микроскоп – оптический прибор, с помощью которого рассматривают и изучают мельчайшие организмы и предметы, невидимые простым глазом. Микроскопы, производимые отечественной промышленностью для биологических исследований: биолам P-микроскоп биологический рабочий с моно- или бинокулярной насадками, увеличение от 50 до 1800 раз; биолам Д-микроскоп биологический дорожный; биолам С-микроскоп биологический студенческий; люмам Р- рабочий и люмам И-исследовательский люминесцентные микроскопы.
Каждый микроскоп имеет две основные системы: механическую и оптическую (рис.1). Механическая система микроскопа состоит из штатива, включающего ножку (1) и тубусодержатель (3) или колонку. К ней прикреплен тубус (5) с вращающимся барабаном-револьвером (7) на нижнем конце. Тубус передвигается макрометрическим винтом (2), для тонкой наводки служит микрометрический винт (11). К ножке прикреплен предметный столик (8), на который помещают исследуемый препарат, закрепляемый зажимами.
Оптическая система состоит из зеркала(10),конденсора(9) с ирисовой диафрагмой, объективов (6) и окуляра (4). Степень увеличения объективов указана на оправе:*8,*10, *20, *40, *60, *90. Различают два типа объективов: сухие и иммерсионные (масляные). При работе с иммерсионными объективами каплю масла (кедрового, вазелинового или касторового) наносят на мазок и с помощью макрометрического винта осторожно под контролем глаза погружают объектив масло, не прикасаясь к стеклу. Наблюдая в окуляр, медленно поднимают макровинтом тубус до появления изображения. Для тонкой наводки используют микрометрический винт. Окуляры отечественных микроскопов обозначаются 7*, 10*, 15*, 20*, т. е. цифрами, указывающими на степень их собственного увеличения. Умножив цифру на оправе объектива на цифру окуляра, получим число, показывающее, во сколько раз увеличивает микроскоп.
Перед работой с микроскопом надо установить освещение. При дневном свете пользуется плоским зеркалом, при искусственном – вогнутым. В качестве источников искусственного света используют лампы – осветители. Когда свет установлен, берут препарат, помещают на предметный столик и изучают сначала под малым, а затем под большим увеличением, используя для этого сухую или иммерсионную систему.










Отчёт

Задание №1
Мероприятия
Меры предосторожности







































































Задание №2
Микроскоп
Техника микроскопии

Механическая часть
Оптическая часть




















































































Вывод:________________
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·Дата ____________________ Подпись преподавателя __________________________________


Лабораторная работа № 2.

Тема: Ознакомление со схемами постановки серологических реакций.

Цель занятия: Изучение методики постановки реакций иммунитета.

Литература: И.А. Бакулов. Практикум по эпизоотологии с микробиологией с.52 – 68.
Задание № 1. Изучить методику постановки реакции преципитации. Оценка результатов
реакции.
Задание № 2. Изучить методику постановки реакции агглютинации. Оценка результатов
реакции.
Задание № 3. Изучить методику постановки реакции связывания комплемента. Оценка
результатов реакции.

Методика выполнения:
Задание № 1.
Реакция преципитации (РП). Исследуют робы кожи на сибирскую язву. Пробы предварительно простерилизованы в автоклаве.
К о м п о н е н т ы р е а к ц и и : кусочек кожи измельчают. 1 г полученной массы помещают в пробирку, заливают 10 мл физраствора и 30 – 40 мин кипятят в водяной бане ( горячий способ постановки реакции ). Другой вариант: 1 г измельченной кожи растирают в ступке с песком, заливают 0,3 %- ным карболизированным физраствором ( 1: 10 ) и 16 – 18 ч настаивают при комнатной температуре ( холодный способ ). Экстракт, который может содержать сибиреязвенный антиген ( преципитиноген ), фильтруют через асбестовую вату до полной прозрачности. Второй компонет – биофабричная преципитирующая сибиреязвенная сыворотка. Перед постановкой реакции ее фильтруют.
П о с т н о в к а р е а к ц и и . Мерной пипеткой наливают в специальные преципитационные пробирки по 0,2 – 0,3 мл преципитирующей сыворотки. Затем пастеровской пипеткой осторожно по стенке пробирки наслаивают на сыворотку исследуемый экстракт в таком же количестве (метод наслаивания). При использовании метода подслаивания в пробирки наливают исследуемый экстракт, а затем, опустив пастеровскую пипетку на дно пробирки, подслаивают под нее преципитирующую сыворотку.
Реакция считается положительной, если в течение первых 15 мин с момента ее постановки на границе соприкосновения экстракта и сыворотки образуется серовато-белое кольцо. Если это кольцо недостаточно резко выражено, реакцию оценивают как сомнительную, а при отсутствии кольца – как отрицательную.
Непосредственно перед постановкой реакции ставят контроли с ее компонентами: 1) сибиреязвенный антиген (биофабричный) + преципитирующая сыворотка – реакция должна быть положительной; 2) сибиреязвенный антиген + нормальная сыворотка лошади – реакция должна быть отрицательной; 3) физраствор + преципитирующая сыворотка – реакция должна быть отрицательной.
Задание № 2.
Р е а к ц и я а г г л ю т и н а ц и и (РА). Исследуют сыворотки крови животных на бруцеллез.
К о м п о н е н т ы р е а к ц и и: пробы сывороток крови, единый бруцеллезный антиген для роз бенгал пробы, позитивная бруцеллезная и негативная сыворотки, фенолизированный (0,5%-ный) физраствор.
Пластинчатая реакция агглютинации с бруцеллезным розбенгал антигеном (РБП). Реакцию проводят на чистых сухих эмалированных пластинках с лунками при температуре 18 – 30*С. С помощью шприца-полуавтомата или микропипетки вносят на дно лунок до 0,03мл исследуемых сывороток. Затем в каждую лунку добавляют по 0.03мл цветного антигена. При исследовании сывороток крови овец, коз, буйволов и северных оленей достаточно 0,015мл антигена. Антиген и сыворотки тщательно смешивают, распределяя полученную смесь по всей поверхности лунки. Пластинку осторожно покачивают. Реакцию учитывают в течение 4 мин после смешивания сывороток с антигеном. При наличии выраженной агглютинации окрашенных бруцелл антигена, проявляющейся образованием розовых хлопьев, реакцию считают положительной, а при отсутствии агглютинации (смесь остается равномерно окрашенной) – отрицательной. Если кровь была доставлена из благополучных хозяйств, все сыворотки с положительной РБП не позже чем на следующий день исследуют в РА и РСК. Окончательная диагностическая оценка сомнительна только при положительной РБП и отрицательных РА и РСК. В остальных случаях она положительная. По аналогичной схеме оценивают результаты исследований сывороток крови КРС, буйволов, лошадей и верблюдов из неблагополучных хозяйств. Но овец, коз, свиней и северных оленей из таких хозяйств признают больными бруцеллезом при положительных результатах РБП без дополнительных исследований.
Перед постановкой РБП ставят контроль антигена с негативной и позитивной бруцеллезными сыворотками и контроль антигена на спонтанную агглютинацию: к 0,03мл антигена добавляют 0,03мл физраствора.
Классический (пробирочный) метод РА. Реакцию с сыворотками крови КРС проводят в объеме 1 мл в разведениях 1:50, 1:100, 1:200 и 1:400. Контроли: с негативной сывороткой в тех же разведениях и с позитивной бруцеллезной сывороткой до ёё предельного титра.
Для исследования каждой сыворотки требуется 5 пробирок. В первую из них вносят 0,1 мл сыворотки и добавляют 2,4 мл физраствора (основное разведение 1:25). В третью, четвёртую и пятую пробирки вливают по 0,5 мл физраствора. Затем из первой пробирки переносят во второю и третью по 0,5 мл основного разведения сыворотки. После смешивания 0,5 мл содержимого третьей пробирки переносят в четвертую и так же – из четвертой в пятую, после чего из пятой пробирки удаляют 0,5 мл полученной смеси. Затем во вторую, третью, четвёртую и пятую пробирки добавляют по 0,5 мл антигена, разбавленного физраствором в соотношении 1:10. Так получают требуемые разведения сыворотки. В первую пробирку антиген не вносят (контроль качества сыворотки). Сыворотки разливают микропипеткой (с грушей), а при массовых исследованиях – групповыми дозаторами Флорентийского.
Штатив с пробирками осторожно встряхивают, помещают на 16 – 20 ч в термостат при 37 –38*С, затем в течение 1 ч выдерживают при комнатной температуре и проводят учёт реакции.
Учёт начинают с контроля. Ход реакции нормален, если в контроле с негативной сывороткой получен отрицательный результат, а с позитивной бруцеллёзной сывороткой – положительный. Результаты определяют в крестах. Четыре креста (++++) – полное просветление жидкости и наличие ясно выраженного осадка в виде зонтика. При встряхивании пробирки зонтик разбивается на хлопья и комочки, а жидкость остаётся прозрачной (100% агглютинации). Три креста (+++ )-неполное просветвление жидкости и хорошо выраженный зонтик (75% агглютинации). Два крета (++) – слабое просветвление жидкости и умеренно выраженный зонтик (50% агглютинации). Один крест (+) – едва заметное просветвление жидкости, зонтик выражен слабо (25% агглютинации). Минус (-) - просветвления жидкости нет, зонтик не образовался, на дне пробирки виден осадок в виде точки, при лёгком встряхивании пробирки образуется равномерная взвесь.
За титр антител принимают последнее разведение сыворотки, в котором произошла агглютинация не менее чем на два креста. У КРС бруцеллёз считают установленным при положительной РА в титре 1:200 и выше, т.е. при наличии в 1 мл сыворотки не менее 200 МЕ антител.
Задание № 3.
Реакция связывания комплемента ( РСК ). С у щ н о с т ь р е а к ц и и. При добавлении к сыворотке, содержащей определённые антитела (в нашем примере – бруцеллёзные), соответствующего антигена, а затем комплемента происходит соединение этих трех компонентов (бактериологическая система). Факт указанного соединения выявляют при внесении в бактериолитическую систему второй, гемолитической системы, состоящей из гемолизина и эритроцитов барана. При отсутствии в исследуемой сыворотке антител к применённому в реакции антигену про изойдёт гемолиз эритроцитов, так как комплемент, не связавшийся в первой системе, соединится с гемолизином во второй, гемолитической системе.
К о м п о н е н т ы р е а к ц и и: испытуемая и контрольные (негативная и позитивная бруцеллезная) сыворотки крови КРС; антиген бруцеллезный, единый для РА, РСК и РДСК в рабочем титре, указанном предприятием-изготовителем; комплемент – свежая, консервированная или сухая сыворотка крови морской свинки; гемолитическая сыворотка (гемолизин) в удвоенном титре, указанном изготовителем; эритроциты барана – 2,5%-ная (от осадка) взвесь в физрастворе; физраствор. В день постановки реакции испытуемую и контрольные сыворотки инактивируют в водяной бане при 60 – 62*С в течение 30мин.
Перед постановкой главного опыта проводят титрование комплемента в гемолитической и бактериологической системах. Периодически (один раз в 3 месяца и каждую новую серию) титрируют и гемолизин.
Титрование гемолизина. В начале готовят основное разведение гемолизина – 1:100 (0,1мл гемолизина + 9,9мл физраствора). Затем из основного готовят разведения 1:500; 1:1000 и т.д. до 1:4000 по следующей схеме:

Основное разведение Физиологический Получаемое
гемолизина 1:100мл раствор,мл разведение
0,4
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
· 1:4000

В пробирки вносят по 0,2мл каждого разведения гемолизина и добавляют по 0,2мл комплемента в разведении 1:20, по 0,2мл 2,5%-ной взвеси эритроцитов, по 0,4мл физраствора. Пробирки встряхивают, ставят в водяную баню при 37 – 38*С на 10 мин и затем учитывают результат. Титр гемолизина – его наименьшее количество, необходимое для полного гемолиза в течение 10 мин 0,2мл взвеси эритроцитов в присутствии 0,2мл комплемента, разведенного 1:20. Рабочий титр должен быть в 2 раза выше.
Титрование комплемента в гемолитической системе. Комплемент в разведении 1:20 разливают в пробирки в дозах от 0,02 до 0,2мл с интервалами по 0,02мл. В каждую пробирку добавляют физраствор до объема 0,2мл. Затем во все пробирки вносят по 0,2мл гемолизина в удвоенном титре и по 0.2мл 2,5%-ной взвеси эритроцитов. Следующий этап – добавление физраствора по 0,4мл. После встряхивания пробирки на 10 мин помещают в водяную баню при з7 – 38*с и учитывают результат. Титр комплемента – его наименьшее количество, вызывающее полный гемолиз эритроцитов.
Титрование комплемента в бактериолитической системе. Оно позволяет окончательно определить дозу комплемента для системы с испытуемой сывороткой и антигеном. Используют инактивированные позитивную бруцеллезную и негативную сыворотки. Их разводят физраствором 1:5 и разливают по 0,2мл: каждую в два ряда по 10 пробирок. Затем в пробирки каждого ряда вносят комплемент, разведенный 1:20, в возрастающих дозах: от 0,02 до 0,2мл с интервалом 0,02мл. Недостающее по 0,2мл содержимое пробирок дополняют физраствором. После розлива комплемента в первый ряд пробирок с каждой сывороткой вносят по 0,2мл антигена в рабочем разведении, а во второй ряд – по 0,2мл физраствора. Пробирки встряхивают и на 20 мин ставят в водяную баню. Затем во все пробирки добавляют по 0,4мл гемолитической системы (0,2мл гемолизина в рабочем титре и 0,2мл 2,5%-ной взвеси эритроцитов) и вновь ставят на 20 мин в водяную баню при 37 – 38*С. После этого учитывают результат. Титр комплемента в бактериолитической системе – его минимальное количество, вызывающее полный гемолиз взвеси эритроцитов в пробирках с негативной сывороткой с антигеном и без него, а также в пробирках с позитивной сывороткой без антигена при задержке гемолиза в пробирках с позитивной сывороткой с антигеном.
Проведение главного опыта. Испытуемую сыворотку исследуют в разведениях 1:5 и 1:10 с антигеном и 1:5 без антигена (контроль). Реакцию проводят в объеме 1 мл – каждый компонент берут в объеме 0,2 мл в установленном рабочем титре (разведении). Контроли главного опыта: негативная и позитивная бруцеллёзная сыворотки в разведениях 1:5 и 1:10 с антигеном и 1:5 без антигена; гемолитическая система (гемолизин и эритроциты по 0,2 мл и 0,6 мл физраствора).
После розлива компонентов бактериолитической системы (сыворотка +антиген+комплемент) пробирки в течение 20 мин выдерживают в водяной бане. Затем разливают компоненты гемолитической системы и вновь на 20 мин помещают пробирки в водяную баню. Результаты реакции учитывают через 3 – 4 ч после извлечения штативов из водяной бани и оценивают в крестах: ++++ - отсутствие гемолиза; +++ - гемолиз 25% эритроцитов; ++ - гемолиз 50% эритроцитов; + - гемолиз 75% эритроцитов; - (минус) – полный гемолиз эритроцитов, отсутствие осадка, интенсивное окрашивание жидкости гемоглобином. Реакцию признают положительной при задержке гемолиза на 2 – 4 креста в одном или двух разведениях испытуемой сыворотки и сомнительной – при задержке гемолиза с оценкой в один крест. При получении сомнительного результата сыворотки крови от соответствующих животных через 15 – 30 дней исследуют повторно. Если сомнительная РСК получена дважды, животных считают положительно реагирующими.

Отчёт
Задание №1 РП.


Постановка реакции
(в рисунке)
Учёт реакции



















































Задание №2 РА.


Постановка реакции
(в рисунке)
Учёт реакции



























































Задание №3 РСК (общая схема)

Компоненты и этапы постановки РСК
Больное животное
Здоровое животное

Ьактериометрическая система































Геометрическая система



































Результат



Заключение
























Вывод:_____________________________________________________________________
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·____________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________

Дата ____________________ Подпись преподавателя __________________________________



Практическое занятие №1.

Тема: Изучение аппаратов, установок для дезинфекции. Проведение механической очистки и дезинфекции помещений.
Цель занятия: Ознакомление с аппаратурой, установками для дезинфекции и правилами работы с ними.
Литература: И.А.Бакулов. Практикум по эпизоотологии с микробиологией с.94 – 107.
Г.А.Кононов. Практикум по заразным болезням для оператора по ветеринарным обра- боткам животных. с.227 – 254
Задание №1. Ознакомится с дезинфекционной аппаратурой и правилами работы с ней.
Задание №2. Изучить методику приготовления дезсредств. Определение потребности в дез.средствах при проведении дезинфекции.
Задание №3. Изучить последовательность проведения дезинфекции помещений, предметов ухода и снаряжения. Бактериологический
контроль качества дезинфекции.
Задание №4. Изучить методы утилизации и уничтожения трупов животных, павших от заразных болезней.
Задание №5. Изучить правильность оформления акта на проведенную дезинфекцию.
Методика выполнения.
Задание №1
Аппаратура и механизированные установки, применяемые для дезинфекции. Для дезинфекционных работ используют разнообразную ветеринарно-санитарную технику: специализированные дезинфекционные машины, аппараты для дезинфекции аэрозолями, дезинфекционные камеры, аппаратуру для дезинфекции физическими методами и др.
Рис.1. Агрегат дезинфекционный автомобильный.
А г р е г а т д е з и н ф е к ц и о н н ы й а в т о м о б и л ь н ы й (АДА) предназначен для дезинфекции и дезинсекции в больших масштабах помещений холодильными и горячими растворами, побелки помещений и их санитарной промывки, обеззараживания в дезинфекционной камере одежды, обуви и инвентаря, а также снятия с кожного покрова животных бактериальной или радиоактивной пыли.
АДА смонтирован на шасси ГАЗ-53А, имеет салон для бригады специалистов из 4 человек, емкость для дезинфицирующего раствора на 2000 л с топкой, емкость для маточного раствора на 300 л и бак для аэрозольной жидкости на 100 л. В задней части машины расположены пароформалиновая камера вместимостью 2,5 м3, специальное устройство для обеспыливания кожного покрова животных и аэрозольный генератор.

Рис.2. Дезинфекционная установка системы Н.М.Комарова (ДУК):

1 – ящики для шлангов, инструментов и пр.; 2 – котел для подогрева воды и дезинфицирующего раствора; 3 – цистерна для воды или рабочего раствора; 4 – бачок для исходного дезинфицирующего раствора; 5 – манометр для измерения давления; 6 – дополнительная кабина.
Д е з и н ф е к ц и о н н а я у с т а н о в к а с и с т е м ы Н. М. К о м а р о в а (ДУК) предназначена для дезинфекции и дезинсекции животноводческих помещений холодными и горячими растворами. Установка оборудована устройством для аэрозольной дезинфекции. Монтируют ее на шасси автомобиля ГАЗ-52. Имеет цистерну для раствора на 1000 л, котел для нагрева, емкость для маточных растворов, компрессорную установку.

Рис.3. Дезинфекционная установка ЛСД – 3М.

Д е з и н ф е к ц и о н н а я у с т а н о в к а ЛСД предназначена для дезинфекции животноводческих помещений холодными и горячими растворами, эмульсиями и суспензиями. Смонтирована на шасси автомобильного прицепа ГАЗ-704, имеет вихревой насос, создающий давление до 400 – 500 кПа (4 – 5 атм), резервуар для дезинфецирующей жидкости на 360 л, выбрасывающий рукав с распылителями, топку для подогрева дезинфецирующего раствора.

Рис.4. Ветеринарно – дезинфекционная машина ВДМ – 2.
В е т е р и н а р н а я д е з и н ф е к ц и о н н а я м а ш и н а ВДМ смонтирована на шасси автомобиля УАЗ-469Б, имеет емкости для растворов на 4оо л, вихревой насос, воздушный нагреватель и два барабана с напорными шлангами по 20 м, а также приспособления для обеспыливания шерстного покрова животных.

Рис.5. Установка дезинфекционная самоходная УДС.

У с т а н о в к а д е з и н ф е к ц и о н н а я с а м о х о д н а я (УДС-2) смонтирована на электрокаре ЭП-006, имеет основной резервуар на 960 л и две емкости для маточного раствора по 53 л каждая, нагнетательный насос УН-41000 производительностью 85 л/мин. УДС-2 предназначена для крупных животноводческих комплексов. С ее помощью можно проводить гидроочистку помещений горячей и холодной водой, а также дезинфекцию и дезинсекцию.
Рис.6. Установка дезинфекционная передвижная модернизированная УДП-М.

Д е з и н ф е к ц и о н н а я п е р е д в и ж н а я у с т а н о в к а (УДП-М) смонтирована на малогабаритной трехколесной тележке, имеет резервуар на 220 л и нагнетательный насос УН-41000 с электродвигателем мощностью 4 кВт. Предназначена для работ по гидроочистке, дезинфекции и дезинсекции помещений крупных промышленных комплексов с шириной проходов не менее 0,85м.
П о р т а т и в н ы е д е з и н ф е к ц и о н н ы е а п п а р а т ы предназначены для обработки небольших по объему животноводческих помещений или отдельных зараженных объектов, участков в труднодоступных местах. Эти аппараты небольших габаритов и массы, чаще гидравлического или пневматического действия, по исполнению бывают ранцевыми или напольными.
Рис. 7. Ручной гидропульт «Костыль».

Р у ч н о й г и д р о п у л ь т «К о с т ы л ь» представляет собой поршневой насос, оборудованный всасывающим рукавом с фильтром и напорным шлангом с распылителем. В зависимости от вида распылителя может давать сплошную струю дезраствора или распылительный факел.
Р у ч н о й а п п а р а т «С е в е р» УАРС по устройству и способу использования аналогичен гидропульту.
Р а н ц е в ы й р а с п ы л и т е л ь АО-2 «А в т о м а к с» имеет сосуд вместимостью 8 л. Масса его 6 кг. Длина факела распыла дезинфицирующего раствора 1,2 – 3,5 м.

Рис.8. Опрыскиватель моторный переносной ОМП-2 «Олень».

П е р е н о с н о й м о т о р н ы й о п р ы с к и в а т е л ь (ОМП) «О л е н ь» выполнен на базе мотора от бензопилы. Имеет два резервуара вместимостью до 100 л и два напорных шланга по 25 м. Общая масса около 45 кг. Рабочее давление до 80 кПа (0,8 атм).
П о р т а т и в н а я э л е к т р и ч е с к а я д е з и н ф е к ц и о н н а я у с т а н о в к а ДУБ состоит из электронасоса «Кама-3», всасывающего рукава и напорного шланга с универсальным распылителем. Производительность ее 15 – 20 л/мин при давлении 200 – 400 кПа.
А п п а р а т ы д л я п о л у ч е н и я д е з и н ф е к ц и о н н ы х а э р о з о л е й : форсунки (распылители), насадки, пистолеты-распылители, пневматические и дисковые аэрозольные генераторы. Форсунки бывают механическими (жидкость подается под давлением и распыляется, вытекая из небольшого отверстия), пневматическими (жидкость распыляется потоком воздуха) и дисковыми (жидкость разбрызгивается , срываясь с кромки быстровращающегося диска). Для дезинфекции в ветеринарной практике используют аэрозольные генераторы различных систем: САГ, ДАГ, ПВАН, АГ-Л6 и др.



Рис. 9. Струйный аэрозольный генератор САГ-1 (с лева) и дисковый аэрозольный генератор ДАГ (с права)

Рис.10.Пневматическая вихревая аэрозольная насадка ПВАН-4.

Д е з и н ф е к ц и о н н ы е к а м е р ы .Различают три типа камер: горячевоздушные, паровые и газовые. Примером горячевоздушной камеры является сушильный шкаф. Из паровых камер наиболее распространена паровая стационарная камера Крупина. Примером газовой камеры может служить пароформалиновая камера, в которой предметы подвергаются одновременному воздействию водяного пара и формалина. Пароформалиновую дезинфекцию можно применить и для обработки животноводческих помещений. Осуществляется она с помощью сосуда, куда наливают разведенный на половину водой формалин. Сосуд помещают на подставку и подогревают снизу горелкой. Через отверстие в верхней части сосуда пары кипящего формалина поступают в помещение. Промышленность выпускает огневые паровоздушные пароформалиновые камеры (ОППК), монтируемые на автоприцепах.


Задание № 2.
Приготовление дезинфицирующих растворов. Нужное количество исходного дезинфицирующего вещества отвешивают или отмеривают мерной посудой. Затем взятое вещество осторожно растворяют при помешивании небольшими частями в сосуде с водой. После этого в сосуд доливают воду до необходимого объема. Хранить приготовленные растворы не рекомендуют, их необходимо сразу использовать.
Расчет потребности дезинфекционных средств. Вначале рассчитывают общую площадь помещений, подлежащих дезинфекции, включая площадь пола, стен, потолка, перегородок и поверхностей всех объектов, подлежащих увлажнению дезсредствами. Затем подсчитывают количество в литрах рабочего раствора, необходимого для дезинфекции. Для однократного орошения растворы дезинфицирующих средств обычно готовят из расчета 0,3 – 0,5 л/м 2 суммарной площади помещений. Например, для коровника общей площадью 2400 м 2 потребуется (2400*0,5) 1200 л дезинфецирующего раствора.
В обоснованных случаях норму расхода растворов увеличивают в соответствии с действующими инструкциями при отдельных болезнях.
Концентрацию рабочих растворов дезинфицирующих средств определяют, исходя из цели дезинфекции (профилактическая или вынужденная) и принадлежности возбудителя болезни к группе по устойчивости в соответствии с приложением 1 действующей инструкции.
По устойчивости к химическим дезинфицирующим средствам возбудителей основных инфекционных болезней животных делят на четыре группы: малоустойчивые, устойчивые, высокоустойчивые и особо устойчивые.
Для первой и второй групп малоустойчивых возбудителей болезней используют наименьшую концентрацию дезинфицирующих веществ (едкий натр, формалин, хлорная известь, гипохлорит кальция и др. по 2%). В этой же концентрации проводят профилактическую дезинфекцию.
Для третьей и четвертой групп высокоустойчивых возбудителей туберкулеза, сибирской язвы, анаэробных инфекций и др. концентрацию дезинфицирующих растворов увеличивают в 2 – 3 раза и более. По режимам четвертой группы проводят дезинфекцию при остропротекающих инфекционных болезнях невыясненной этиологии.
Расчет количества дезинфицирующего средства для приготовления намеченного объема (1200 л) заданной концентрации раствора (2%-ного) проводят с учетом содержания активнодействующего вещества по формуле
Х= АВ/С,
где Х – количество дезинфицирующего препарата, необходимое для приготовления раствора, кг; А – количество раствора, которое необходимо приготовить для дезинфекции, л; В – концентрация дезинфектанта по действующему веществу, нужная в растворе; С – содержание действующего в препарате, %.

В нашем примере для дезинфекции коровника едким натром (С= 100) потребуется (1200*2):100=24 кг препарата, а хлорной извести (С=25) (1200*2):25=96 кг. Растворы дезинфекционных средств готовят в чистой ёмкости, которая не должна разрушаться от действия растворённых в ней дезинфектантов. Малые объёмы дезсредств удобно готовить в стеклянной или эмалированной посуде, большие – в металлических или деревянных бочках или ёмкостях.
При необходимости приготовления больших объёмов дезинфицирующих растворов вначале готовят маточный концентрированный 10 – 20 %-ный или 30 %-ный раствор по действующему веществу. Из маточного раствора непосредственно перед дезинфекцией делают рабочий раствор, для чего добавляют воду при помешивании из расчёта 1:5, 1:10 или 1:15.
Для приготовления 1200 л 2 %-ного раствора едкого натра взвешивают 24 кг препарата и растворяют его вначале в 120 л воды в металлической бочке (20 %-ный раствор). В холодной воде жидкий натр долго растворяется, поэтому лучше использовать горячую (70 – 80*С) воду. Для лучшего растворения практические ветеринарные специалисты добавляют в качестве катализатора отслужившие алюминиевые изделия: поршни машин, посуду, проволоку и др. Затем берут один объем этого концентрированного раствора и разбавляют 9 объемами воды в другой емкости (соотношение 1:10).
Для получения 100 л 2%-ного раствора формальдегида необходимо взять 5 л 40%-ного формалина и 95 л воды.
Для получения 10%-ного известкового молока берут 1 кг негашеной извести, гасят ее в 1 л воды, а затем добавляют 9 л воды.
Для приготовления 100 л раствора хлорной извести с содержанием в растворе 2 % активного хлора нужно взять 8 кг хлорной извести, содержащей 2 % хлора, и вначале добавить небольшое количество воды до получения кашицеобразной массы, чтобы не было комков. Потом при помешивании добавляют остальное количество воды до 100 л. взвесь отстаивают в течении суток в закрытой емкости. Осветленный слой используют для дезинфекции.
Задание № 3.
Организация и техника проведения дезинфекции различных объектов. Перед началом дезинфекции животных удаляют из помещений, проводят механическую очистку и приступают к дезинфекционным работам.
М е х а н и ч е с к а я о ч и с т к а п о м е щ е н и й включает в себя удаление навоза, грязи, мусора и прочих нечистот из помещений и с окружающей территории. Для этого используют лопаты, метлы, грабли, скребки, щетки и т.д. Механическую очистку производят в такой последовательности:
навоз, подстилку, мусор и т.п. увлажняют водой, а при наличии инфекционной болезни дезинфицирующим раствором;
увлажняют пол, стены, кормушки, перегородки;
щетками или метлами, смоченными дезинфицирующим раствором, удаляют пыль, паутину и пр. с потолка, стен, кормушек, перегородок, столбов и предметов внутреннего оборудования;
тщательно очищают пол помещения и сточные желоба от навоза и грязи;
навоз, остатки корма, мусор в зависимости от характера инфекционной болезни обезвреживают биотермическим методом или химическими веществами.
При сибирской язве и некоторых других болезнях навоз сжигают.
Д е з и н ф е к ц и я п о м е щ е н и й. Выбор дезинфицирующего средства зависит от объекта дезинфекции, а также от характера заразной болезни. Средства, рекомендуемые для дезинфекции при отдельных заразных болезнях, приведены в действующей инструкции.
Дезинфицирующий раствор наносят в следующем порядке: вначале дезинфицируют пол, затем орошают стены и все перегородки, не допуская пропусков. После этого обрабатывают потолок. Его дезинфицируют в последнюю очередь, чтобы капли раствора не попадали на одежду рабочего. Обрабатывают также кормушки, ясли, внутреннее оборудование помещений и все предметы, при помощи которых произвели механическую очистку (лопаты, грабли, метлы и т. п.). В заключение повторно дезинфицируют пол. Помещение закрывают на 2 – 3 ч, а затем проветривают.
Дезинфекция спецодежды и предметов ухода за животными. Спецодежду дезинфицируют парами или аэрозолями формальдегида, методом замачивания в дезинфицирующих растворах, кипячением или текучим паром, а также автоклавированием.
Парами формальдегида обеззараживают изделия из хлопчатобумажных и синтетических тканей, кожи, резины, брезента, войлока, меха, металлов и дерева.
Для обеззараживания спецодежды, снаряжения и предметов ухода за животными методом замачивания применяют растворы хлорамина, формалина и фенола. Изделия из металлов (инвентарь для уборки, клетки для мелких животных и т.п.) дезинфицируют путем погружения их на 30 – 60 мин в один из растворов, используемых для дезинфекции помещений.
Обеззараживание спецодежды кипячением проводят в 1%-ном растворе кальцинированной соды в течение 30 мин при неспорообразующих микроорганизмах и 90 мин для уничтожения споровой микрофлоры. Спецодежду, загрязненную кровью или выделениями животных, перед кипячением или автоклавированием замачивают в холодной воде с добавлением 2 %-ной кальцинированной соды. Экспозиция 2 ч.
Стирку и профилактическую дезинфекцию спецодежды проводят в благополучных хозяйствах не реже 1 раза в неделю. При обслуживании животных, заболевших болезнями, неопасными для человека, стирку и дезинфекцию спецодежды делают не реже 2 раз в неделю, а при зооантропонозах – ежедневно.
Обувь дезинфицируют каждый раз при входе и выходе из животноводческих помещений на дез. ковриках.
Кожаную обувь и седла обеззараживают, протирая 3%-ным раствором фенола или указанным раствором с добавлением сулемы 1:1000.
Дезинфекция почвы. Для дезинфекции поверхностных слоев почвы применяют взвесь хлорной извести с содержанием 5 %-ного активного хлора, 4%-ный раствор формалина, 18%-ную эмульсию феносмолина, 10%-ный раствор серно-карболовой смеси или едкого натра из расчета 10 л раствора на 1 м 2 .
При споровой микрофлоре почву пропитывают одним из указанных растворов, а затем то место, где лежал труп животного, перекапывают на глубину 25 см, смешивая землю с сухой хлорной известью из расчета 3 части почвы на 1 часть извести. При неспоровой микрофлоре землю перекапывают и смешивают с сухой хлорной известью из расчета 5 кг извести на 1 м 2 площади. При перемешивании с извести почву увлажняют. О проведении дезинфекции составляют акт.
Дезинфекция навоза и помета. В неблагополучных по инфекционным болезням хозяйствах навоз и помет обеззараживают биологическими, химическими и физическими способами.
К биологическим относятся биотермическое обеззараживание твердых фракций навоза или его длительное сохранение в навозохранилищах. Биотермическое обеззараживание навоза проводят в штабелях на специально подготовленной площадке, расположенной не ближе 200 м от помещений. Навоз укладывают рыхло, не допуская его утрамбовывания.
Биотермическим методом обеззараживают навоз от возбудителей неспорообразующих бактериальных и вирусных инфекций, а также от яиц и личинок гельминтов и мух. При спорообразующих возбудителях биотермический метод не применяют. Твердые фракции навоза, обсемененные спорообразующими возбудителями, необходимо сжигать.
Для длительного выдерживания полужидкого навоза оборудуют секционное навозохранилище, секции которого заполняют поочередно. Срок нахождения навоза в секциях не менее 12 мес. Навоз, обсемененный микобактериями туберкулеза, обеззараживают выдерживанием в течении 2 лет.
Жидкий и полужидкий навоз дезинфицируют аммиаком. Его доставляют к навозохранилищу в автоцистернах и подают по шлангу, заканчивающемуся иглой, на дно секции хранилища. Иглу перемещают через каждые 1 – 2 м для того, чтобы обработать аммиаком всю массу навоза. Расход 30 кг аммиака на 1 м 3 массы навоза. Экспозиция не менее 5 сут. На малых фермах жидкие фракции навоза можно дезинфицировать растворами формальдегида, хлорной известью, тиазоном или негашеной известью. Жидкий навоз влажностью 90 – 96% можно обезвреживать на пароструйной установке ВНИИВВиМ.
Бактериологический контроль качества дезинфекции. Качество дезинфекции определяют по наличию или отсутствию санитарно-показательных микроорганизмов: кишечной палочки, стафилококков или спорообразующих аэробов на поверхности обеззараживаемых объектов. Присутствие этих микробов после дезинфекции свидетельствует о неудовлетворительно проведенном обеззараживании объекта, а их отсутствие – о качественно проведенной дезинфекции.
По наличию или отсутствию кишечной палочки определяют качество дезинфекции при неспорообразующих бактериальных (кроме туберкулеза) и вирусных болезнях. По наличию или отсутствию стафилококков контролируют качество дезинфекции при туберкулезе, болезнях, вызываемых спорообразующими микроорганизмами, и экзотических.
Для бактериологического контроля с разных участков поверхности дезинфицированного объекта берут пробы стерильными ватными тампонами, смоченными в стерильном нейтрализующем используемый дезинфектант растворе. Пробы (смывы, отпечатки, соскобы) берут с 10 – 20 различных участков поверхности дезинфицированных помещений или объектов. Участки площадью 10 * 10 см тщательно протирают тампонами, после чего их помещают в пробирки с нейтрализующей жидкостью. Нейтрализующими служат: раствор гипосульфита для хлорсодержащих дезинфектантов; раствор уксусной кислоты для щелочей; раствор аммиака для формалина; раствор бикарбоната натрия для кислот и перекиси водорода. Нейтрализующие растворы готовят в концентрациях в 10 раз меньших, чем концентрация использованного дезинфицирующего вещества.
Пробы доставляют в лаборатории в течение 3 – 6 ч с момента отбора. Выделение и индикацию санитарно-показательных микроорганизмов в лаборатории проводят на специальных или селективных питательных средах.

Задание № 4.
Утилизация трупов животных. Трупы животных обеззараживают на ветсанутильзаводах, в биотермических ямах или уничтожают сжиганием на кострах или в специальных трупосжигательных печах. На утильзаводы их перевозят на спецавтомашинах для перевозки трупов (ГАЗ-САЗ 35-07, ГАЗ-66) или специально оборудованном транспорте с непроницаемым для жидкости дном и бортами.
На утильзаводах трупы обеззараживают в автоклавах или варочных котлах большой вместимости при температуре до 130*С в течение 30 мин. затем разваренную массу загружают в вакуумгоризонтальные котлы, высушивая при температуре 70 – 80*С в течение 2 – 3 ч и подвергают технологической обработке до получения мясокостной муки.
Биотермические ямы (ямы Беккари) устраивают в сухих, возвышенных местах, расположенных не ближе 0,5 км от населенных пунктов, предприятий, проезжих дорог, пастбищ, рек, прудов, колодцев. Выбранный участок огораживают забором не менее 2 м, с внутренней стороны забора роют канаву глубиной не менее 1,5 м и шириной не менее 1 м. Над ямой устраивают навес, а около навеса – помещение для вскрытия трупов. Трупы сбрасывают в яму, где температура в гниющей массе достигает 65 -–70*С, что обеспечивает гибель возбудителей инфекций.

Задание № 5.
Составление акта о дезинфекции. О проведении дезинфекции составляют акт по установленной форме. В акте отражают: дату дезинфекции; наименование фермы, населенного пункта и хозяйства; фамилии, имена и отчества ветеринарных специалистов, проводивших дезинфекцию; вид дезинфекции, площадь и объекты дезинфекции, метод ее проведения; вид и концентрацию дезинфицирующего средства, а также условия проведения дезинфекции и расход дезинфектанта. Акт подписывают ветеринарные специалисты, проводившие дезинфекцию, и животноводы или владельцы животных


Отчёт
Задание №1
Мобильные установки
Аэрозольные установки
Портативные установки










































































Задание №2. а)
Устойчивость м/о к дез. средствам
Название болезней, % дез. средства

1. Малоустойчивые














2. Устойчивые














3. высокоустойчивые














4. Особоустойчивые






















Задание №2 б). Провести расчёт потребности дез. средства

№
п/п
Длина,
м.
Ширина, м.
Высота,
м.
%дез.
средства
Норма расхода на м2, м3
Результат, л.
Результат, кг.



















1.
80
18
4
2
0,5 л/м2





















2.
90
24
4
5
0,8 л/м2





















3.
88
20
4
40
20мл/м3






















Задание №3 а).

Объект дезинфекции
Дезинфицирующее средство
%

































































































































Задание №3 б). Бактериологический контроль качества дез.

Количество проб
Нейтрализующие растворы
% нейтрализующие растворы
Время отбора после дезинфекции















































Задание №4

Метод утилизации
Характеристика






































































Задание №5
АКТ
о проведении дезинфекции (дезинсекции, дератизации)
«________» _________________________ 200____г.
________________________________________________________________________________
(наименование хозяйства)
Мы, нижеподписавшиеся ____________________________________________________
(должность, Ф.И.О. ветврача (вет. техника), проводящего
________________________________ в присутствии ___________________________________
дезинфекцию, дезинсекцию, дератиз. (указать кто из админ хозяйства
____________________________________________________________ сего числа произвели
присутствовал)
________________________________________________________________________________
(профилактическую, текущую или заключительную дезинфекцию (дезинсек. дератизацию)
по поводу неблагополучия по _________________________ помещений __________________
(указать заболевание) (каких и сколько)
________________________________________________________________________________
кв.метров площади помещений обработано или территории вокруг помещения)
предметов ухода _______________________________________, жижесборников и прочее
________________________________________________________________________________
(какой ёмкости)
Дезинфекция, (дезинсекция, дератизация) проведена ____________________________
________________________________________________________________________________
(указать каким методом, средством)
при следующих режимах:
концентрация дезвещества ________________________________________________________
температура воздуха в помещении __________________________________________________
температура дезраствора ____________
к-во дезраствора на 1 м кв. площади (аэрозоля на 1 м кв.) ______________________________
После дезинфекции помещений оставлено закрытым на _______________ часов.
После проветривание кормушки, перегородки промыты водой.
Всего обработано: помещений ______________________________________________ м. кв.,
выгулов ______________________________________________ м. кв.,
территории _____________________________________________ м.кв.,
предметов ухода ____________________________________________шт.
Всего израсходовано ___________________________________________________
(каких, сколько исходных средств)
Навоз__________________________________________________________________________
(указать, что сделано)

Подписи:




Вывод:__________________________________
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
Дата ____________________ Подпись преподавателя __________________________________

Практическое занятие №2.
Тема: Ознакомление с биопрепаратами, с техникой отбора и пересылкой патологического
материала.
Цель занятия: Изучить правила оценки, браковки, транспортировки биопрепаратов, тех-
нику отбора пат. материала.
Литература: И.А.Бакулов. Практикум по эпизоотологии с микробиологией. с.68 – 91.
Задание № 1. Изучить виды биопрепаратов.
Задание № 2. Изучить правила оценки браковки, транспортировки и хранения биопрепа-
ратов.
Задание № 3. Изучить методику расчета потребности биопрепаратов.
Задание № 4. Изучить инструментарий, применяемый при проведении противоэпизооти-
ческих мероприятий.
Задание № 5. Изучить правила взятия пат. материала от живых животных, в/у и павших
животных.
Задание № 6. Изучить правила фиксации, консервирования, упаковки взятого материала.
Задание № 7. Ознакомиться с документацией на проведенные мероприятия, изучить требования к оформлению сопроводительного документа.

Методика выполнения.
Задание № 1.
Биопрепараты – средства биологического происхождения, применяемые для диагностики и профилактики инфекционных болезней, лечения животных.
Биопрепараты для ветеринарных целей изготавливают на предприятиях Госагробиопрома и в научно-исследовательских институтах по стандартным методикам, разработанным для каждого препарата. Контроль за соблюдением стандартов и качеством биопрепаратов осуществляет всеукраинский государственный научно-исследовательский институт контроля, стандартизации и сертификации ветеринарных препаратов (ВГНКИ). Препараты перед выпуском проверяют на чистоту, безвредность и активность.
Все биопрепараты, используемые в ветеринарной практике, разделяют на лечебно-профилактические, диагностические и стимулирующие средства.
В г р у п п у л е ч е б н о – п р о ф и л а к т и ч е с к и х п р е п а р а т о в входят вакцины, гипериммунные сыворотки, глобулины и некоторые бактериофаги. Применявшиеся ранее вакцины из живых неослабленных культур возбудителей болезней в настоящее время не выпускают. Вакцины из живых ослабленных культур возбудителей, после введения которого животное легко переболевает, приобретая иммунитет, применяют широко. К ним относятся: вакцина против сибирской язвы из штамма 55-ВНИИВВиМ; вакцина против рожи свиней из штамма ВР-2; сухая живая вакцина против бруцеллеза из слабовирулентного штамма №19; сухая живая вакцина из слабоагглютиногенного штамма Бруцелла абортус №82; сухая живая вакцина из штамма Рев-1 бруцелл вида мелитензис4 против чумы свиней: сухая лапинизированная авирулентная вирусвакцина (АСВ) из штамма К, сухая культуральная вирусвакцина из штамма К (ВГНКИ) и сухая культуральная вирусвакцина (ЛК-ВНИИВВиМ); сухая вирусвакцина против ньюкаслской болезни из штамма В1, аналогичные вакцины из штаммов Н и Ла-Сота; сухая вакцина против чумы плотоядных (норок, соболей, песцов, лисиц и собак) из аттенуированного штамма 668-КФ; сухая живая культуральная вирусвакцина против чумы плотоядных «Вакчум» и др.
К вакцинам из инактивированных (убитых) культур возбудителей, инактивация которых достигается физическими методами (теплом, излучением) или химическими веществами (формалин и др.), относятся: противоящурные моно- и поливалентные сорбированные вакцины из вируса типов О, А и С, культивируемых на эпителии языка КРС; поливалентная вакцина ВГНКИ против лептоспироза животных; преципитированная формолвакцина против пастереллеза овец и свиней; поливалентный анатоксин против клостридиозов овец; инактивированная тканевая гидроокисьалюминиевая формолвакцина против вирусной геморрагической болезни кроликов и др.
Бактериофаги с лечебной и профилактической целью применяют при сальмонеллезе и колибактериозе телят и поросят, а также при пуллорозе (тифе) птиц.
Гиперимунные сыворотки, изготовленные путем гиперимуннизации животных бактериальными или вирусными антигенами, используют с профилактической и лечебной целями, в частности, против сибирской язвы, колибактериоза и сальмонеллеза животных, рожи свиней, дизентерии и инфекционной энтеротоксемии овец, вирусной геморрагической болезни кроликов.
Применяют также глобулины – препараты, полученные из гипериммунных сывороток: противосибиреязвенный глобулин, глобулин против болезни Ауески. В ветеринарной практике используют также сыворотки реконвалесцентов при ящуре и при инфекционных болезнях молодняка.
Д и а г н о с т и ч е к и е п р е п а р а т ы (аллергены, антигены, диагностические сыворотки, бактериофаги). Препараты для аллергической диагностики: маллеин для диагностики сапа; туберкулины для диагностики туберкулеза у млекопитающих и птиц; комплексный аллерген из атипичных микобактерий (КАМ); аллерген ВНИИВВиМ для диагностики сибирской язвы у животных. Препараты для лабораторной серологической диагностики: преципитирующая сибиреязвенная сыворотка, сибиреязвенный антиген (преципитиноген), стандартная бруцеллезная агглютинирующая сыворотка, единый бруцеллезный антиген для РА и РСК (РДСК), групповые агглютинирующие лептоспирозные сыворотки, позитивная сапная сыворотка для РСК, листериозный антиген для РСК, антиген для диагностики пуллороза (тифа) птиц и др.
Диагностические бактериофаги: сибиреязвенный и листериозный бактериофаги ВНИИВВиМ.

Задание № 2.
П р а в и л а о ц е н к и и б р а к о в к и б и о п р е п а р а т о в. Препараты, выпускаемые для ветеринарной практики, имеют определенные кондиции и макроскопический вид. Все флаконы с этими средствами должны быть плотно укупорены, залиты сургучом, опечатаны или закрыты резиновыми пробками с металлическими держателями или запаяны в ампулах. Каждый флакон или ампула маркируют и указывают вид препарата, его серию, номер ТУ, для каких животных предназначен, дозы и способ применения, дату изготовления, каким учреждением изготовлен, срок годности, способ хранения и номер государственного контроля. Для сухих средств должен быть указан способ их разведения. Препараты в ампулах и флаконах помещают в коробки с этикетками, на которых также дают полную характеристику препарата. Кроме того, в каждую коробку вкладывают наставление по применению препарата, утвержденное Департаментом ветеринарной медицины Украины.
Перед применением биопрепаратов необходимо прежде всего обратить внимание на срок годности – препараты с истекшим сроком годности бракуют. Затем проверяют упаковку (укупорку), целость флакона (ампулы). Не должно быть трещин, нарушений укупорки, просачивания жидкости через пробку. Некоторые препараты содержат осадок, который при встряхивании должен разбиваться в равномерную муть. Если этого не происходит, флаконы бракуют. Бракуют и флаконы, в которых обнаруживают плесень или примеси. Нельзя применять биопрепараты, если на флаконе нет этикетки (маркировки) или отсутствует номер госконтроля. Биопрепараты бракуют при промерзании, наличии гнилостного запаха, изменении установленной консистенции и цвета.
Т р а н с п о р т и р о в к а и х р а н е н и е б и о п р е п а р а т о в. Большие партии препаратов по железной дороге на большие расстояния транспортируют в специальных вагонах с соответствующей температурой. Небольшие партии отправляют самолетом, почтой или нарочным, особенно при небольшом сроке годности. При транспортировке препараты необходимо предохранять от промерзания и действия высоких температур, не допускать повреждения флаконов.
При хранении нужно соблюдать условия, не изменяющие макроскопический вид и специфические свойства препаратов в течение установленного для них срока годности. Качество препарата могут изменить промерзание, высокая температура, чрезмерная влажность и прямой солнечный свет. Хранить препараты следует в сухих и прохладных помещениях с температурой от 2 до 15*С. Нестойкие препараты хранят в условиях постоянной температуры от 2 до 8*С, лучше – в холодильниках. В условиях ветлечебницы биопрепараты можно хранить в погребах. Для хранения биопрепаратов каждого вида оборудуют отдельное место (полку, ящик, специальный шкаф). Нельзя вместе держать пригодные и забракованные препараты, а также биопрепараты и медикаменты. Помещение для биопрепаратов должно быть закрыто и опечатано, ключ хранится у ответственного лица. В специальной книге ведут строгий учет поступления и расхода биопрепаратов. Запрещено использовать ранее открытые и неизрасходованные до конца флаконы с биопрепаратами, применять такую вакцину на следующий день. Флаконы из-под биопрепаратов обезвреживают автоклавированием или кипячением. Особое внимание обращают на обезвреживание посуды из-под живых вакцин.
Необходимое количество биопрепаратов для проведения вакцинации животных рассчитывают с учетом характера болезни и применяемого против нее биопрепарата (дозировка, кратность применения и т.д.), числа восприимчивых животных, подлежащих иммунизации, возраста животных.

Задание № 3.
Примерная задача. В хозяйстве зарегистрирован случай сибирской язвы КРС. На ферме размещено: КРС 674 головы, в том числе коров 169, нетелей 45, молодняка старше года 209, молодняка от 3 до 6 мес 134, молодняка до 3 мес 117, а также лошадей старше 2 лет – 19 голов.
В личном пользовании рабочих хозяйства КРС 52 головы, в том числе коров 23, молодняка от 3 до 6 мес 18, а также коз до 3-месячного возраста 10 голов, от 3 до 6 мес 6 голов и старше года 13 голов.
Рассчитайте потребное количество биопрепаратов для прививки поголовья против сибирской язвы. Составьте заявку на биопрепараты.

Задание № 4.
Инструментарий, применяемый при проведении противоэпизоотических мероприятий. Он включает:
1) термометры; 2) шприцы различных систем и разной вместимости – от 1 до 200 мл; 3) иглы инъекционные и для взятия крови; 4) безигольные шприцы-автоматы различных систем; 5) приборы для массовых прививок (трехходовой кран Агали и др.); 6) приборы для взятия крови у животных (прибор ПКФ и др.); 7) генераторы аэрозолей для аэрозольной иммунизации (ПЭГА-2 – пневматический эжекторный генератор аэрозолей; дисковый генератор аэрозолей ДАГ-2; струйные генераторы аэрозолей САГ-1, САГ-10 и др.); 8) глазные пипетки для нанесения аллергенов на конъюктиву; 9) рефлектор или глазное зеркало для осмотра носовой полости лошадей на сап; 10) штангенциркуль или кутиметр для измерения толщины кожной складки при исследовании на туберкулез, паратуберкулез; 11) стерилизаторы для обеззараживания шприцев, игл, пипеток и другого инструментария; 12) приспособления для фиксации и укрощения животных; 13) ножницы (Купера и прямые), пинцеты, скальпель.
Инструментарий проверяют на пригодность. Поршни шприцев должны быть плотно притертыми к цилиндрам (герметичность), иглы – острыми, без ржавчины и промытыми. Затем шприцы. Иглы, пипетки и другой инструментарий стерилизуют кипячением.

Задание № 5.
Взятие патологического материала для микробиологических исследований. Патологический материал (кусочки органов и тканей, экскреты и секреты, экссудаты, кровь и т.п.) направляют в лабораторию при необходимости установить или подтвердить причину заболевания или смерти животного в случае подозрения на инфекционную болезнь. При жизни от животного берут и посылают для лабораторного исследования кровь, мочу, мокроту, гной из абсцессов, экссудат из бурс при бурситах, истечения из половых органов, соскобы с пораженных участков кожи, пробы фекалий. От трупа животного посылают на исследование кусочки паренхиматозных органов и тканей, кровь, слизь, экссудаты, трубчатые кости, кусочки кожи, участки пищеварительного тракта (при необходимости – с содержимым), кал и т.п.
При взятии этого материала необходимо соблюдать определенные правила:
патологический материал берут стерильным инструментом в стерильную посуду. Поверхность органа, из которого берут материал, предварительно обжигают пламенем ватного спиртового тампона или прижигают нагретым металлическим шпателем;
материал берут как можно раньше после смерти животного, особенно в летнее время. При условии быстрой доставки взятый материал направляют в лабораторию в неконсервированном виде. При отсутствии такой возможности его консервируют – обычно 30 – 40%-ным водным раствором глицерина. Объем консервирующей жидкости должен быть в 2 раза больше объема взятого материала. Материал для вирусологических исследований можно посылать в замороженном виде;
трупы мелких животных, в том числе птиц, посылают в лабораторию целиком в водонепроницаемом виде;
трубчатые кости с неповрежденными концами направляют целиком, хорошо очистив от сухожилий и мышц. Их заворачивают в марлю или полотно, смоченное 5%-ным раствором фенола, или обильно пересыпают поваренной солью, затем завертывают в марлю или полиэтиленовую пленку;
для исследования кишечника выбирают отрезки с наиболее выраженными изменениями, тщательно освобождают их от содержимого и помещают в стеклянную банку. При подозрении на отравление посылают кишечник с содержимым, для чего отрезок кишечника перевязывают с обеих сторон;
кал для исследования при жизни животного берут из прямой кишки; от трупа кал можно послать в отрезке кишечника, завязанном с обеих сторон. Кал посылают в стаканах, пробирках или банках, закрытых полиэтиленовой пленкой или пергаментной бумагой. Консервация кала не производится. В лабораторию его необходимо доставить не позже 24 ч после взятия;
кожу отправляют в виде кусочков (10*10 см), которые вырезают из наиболее пораженных мест, стараясь не обесценить сырье;
жидкий патологический материал (кровь, гной, слизь, экссудаты, мочу, желчь и т.п.) для микробиологического исследования чаще всего помещают в запаянные пастеровские пипетки, пробирки или флаконы. Перед взятием материала пипетку прожигают над пламенем, тонкий конец сгибают под прямым углом (2 – 3 см от запаянного конца). Затем обламывают конец пипетки и прокалывают орган в предварительно прижженном месте. Насосав материал, запаивают пипетку с обоих концов, избегая при этом пригорания взятой жидкости. Жидкость можно набрать стерильным шприцем с иглой и перелить ее в стерильную пробирку или флакон. Из жидкого патологического материала (кровь, гной, истечения из естественных отверстий и т.п.) можно делать мазки и посылать их в лабораторию.
При жизни у большинства животных кровь для изготовления мазков берут из ушной вены, у птиц – из сосудов гребня или из подкрыльцовой вены. Шерсть на месте взятия крови выстригают, перья выщипывают, кожу дезинфицируют. Стерильной иглой делают укол. Первую каплю крови удаляют ватой (при исследовании с целью исключения кровепаразитарных болезней обязательно делают мазки из первой капли крови), следующую каплю берут на предметное стекло, которое держат между большим и указательным пальцами. Другой рукой берут шлифованное предметное стекло и его краем (под острым углом) прикасаются к краю капли. Дав капле равномерно распределиться по всему краю шлифованного стекла, плавным движением быстро проводят по поверхности стекла, не доводя мазок до другого края стекла на 0,5 – 1 см. чтобы мазок получился ровным. Нужно при движении шлифованным стеклом по предметному стеклу касаться большим и указательным пальцем предметного стекла, на котором изготовляется мазок (пальцы должны двигаться по предметному стеклу, как по рельсам). Мазок высушивают, надписывают дату приготовления, номер или кличку животного. При пересылке в лабораторию нужно указать, были ли фиксированы данные мазки.
От трупов мазки крови готовят из периферических сосудов (чаще всего из ушной вены). При этом берут на стекло толстую каплю крови. Которую затем высушивают на воздухе (не фиксируют!). Мазки из гноя и различных выделений готовят путем размазывания материала на предметном стекле. Вязкий патологический материал следует помещать между двумя предметными стеклами. После растирания материала стекла разводят в стороны и тем самым получают два мазка.
Взятие патологического материала для гистологического исследования. Материал следует брать от свежих трупов. С этой целью вырезают кусочки органов и тканей из наиболее пораженных участков с захватом граничащей с ними неизменной ткани. Материал фиксируют обязательно в стеклянной посуде, используя 10%-ный раствор формалина, объем которого должен в 10 раз превышать объем взятого материала. Через сутки фиксирующую жидкость необходимо заменить свежей.

Задание № 6.
Упаковка и пересылка патологического материала. Посылаемый в лабораторию патологический материал тщательно упаковывают, чтобы полностью исключить возможное распространение возбудителя инфекции. Его заворачивают в холст или мешковину, смоченную дезинфицирующим раствором, и упаковывают в металлический или плотный деревянный ящик с опилками или стружками. Жидкость и органы, отправляемые в лабораторию в консервированном виде, помещают в стеклянную посуду с притертой стеклянной, резиновой или корковой пробкой. Пробку закрепляют проволокой или бечевкой и заливают сургучом (парафином, воском или смолой) так, чтобы укупорка была непроницаемой для жидкости. Закупоренную таким образом посуду помещают в плотный ящик и хорошо упаковывают стружками, опилками или ватой. На лицевой стороне посылки делают надписи: «Осторожно, стекло!» и «Верх!».
Материал, в котором подозревают наличие возбудителей особо опасных инфекций (сибирская язва, эмкар, бруцеллез, чума и контагиозная плевропневмония КРС, ньюкаслская болезнь, ящур, бешенство, африканская и классическая чума свиней), помещают в стеклянную посуду с залитой сургучом пробкой. Затем посуду с материалом, в свою очередь. Помещают в металлическую коробку, которую запаивают, пломбируют или опечатывают и упаковывают в деревянный ящик.
Пипетку с запаянным в ней жидким патологическим материалом обертывают ватой и вкладывают в пробирку, которую плотно закрывают пробкой. Пробирку помещают в металлический пенал (футляр). Изготовленные мазки складывают попарно )мазками внутрь) и, чтобы они не склеивались, прокладывают между ними отрезки спичек. Пересылают материал нарочным или почтой. Патологический материал в нефиксированном виде, а также трупы животных отправляют только нарочным.
В посылку с патологическим материалом вкладывают опись (акт), в котором указывают, какой патологический материал взят, где, сколько и как упакован. Если при вскрытии посылки в лаборатории будут установлены несоответствие документу или порча патологического материала, составляют акт, копию которого отправляют лицу, направившему этот материал.
Задание № 7.
После проведения иммунизации или диагностических исследований оформляется акт.
В акте указывается наименование населенного пункта и хозяйства, дату проведения обработки, кто проводил обработку, какие животные подвергнуты обработке, их количество по видам и по возрастам, каким биопрепаратом производили обработку (наименование биопрепарата, серия, биофабрика, изготовившая препарат, срок годности, номер государственного контроля), каким методом вводили препарат, как обрабатывали поле инъекции и подготавливали инструмент, дозы биопрепарата, общий расход биопрепарата, имелись ли осложнения и их характер. Акт подписывают ветеринарные и зоотехнические специалисты, а также животноводы или владельцы животных.
На патологический материал составляют сопроводительную карточку. В ней указывают адрес лаборатории, на что необходимо исследовать, какой патологический материал направлен, от какого животного, какому хозяйству или владельцу принадлежит животное, дату заболевания и гибели животного, клиническую картину болезни, данные паталогоанатомического вскрытия и предположительный диагноз. Карточку заполняют в двух экземплярах, один из которых оставляют на месте, другой пересылают с материалом в лабораторию







Отчёт
Задание №1. Классификация биопрепаратов

Классификационный признак
Вид биопрепарата

1
2

по назначению:



профилактические:



лечебные:



диагностические:



стимулирующие:



Вакцины:



по способу получения:



количество антигенов



вирусные



бактериальная



способ инактивации



способ депонирования












































































































































1
2

Сыворотка и глобулины


способ получения


назначение

Диагностические биопрепараты


назначение



















































Задание №2

Оценка биопрепарата перед использованием
Транспортировка биопрепарата
Хранение биопрепаратов












































































































Задание №3
Виды и группы животных
Кол-во животных, гол.
Потребность вакцины на гол.
Потребность на всё поголовье






































































































Задание №4
Метод введения
Инструменты

Индивидуальный





Групповой







































Задание №5
Вид исследования
Вид. патматериала
Вещество для консервации





































1
2
3


































































































Задание №6

Вид упаковки
Метод пересылки (доставки)




































































Задание №7

АКТ
о проведении вакцинации
«________» _________________________ 200____г.
________________________________________________________________________________
(наименование хозяйства)
Мы,нижеподписавшиеся ____________________________________________________
(должность, Ф.И.О. ветспециалистов
________________________________________________________________________________
(и представителей хозяйства)
составили настоящий акт о том, что сего числа проведена ______________________________
________________________________________________________________________________
(профилактическая, вынужденная)
вакцинация _____________________________________________________________________
(вид животного, против какой болезни)
Из имеющихся __________ гол. _________________ привито ________________________гол.
________________________________________________________________________________
(вид животных)
________________________________________________________________________________
(в т.ч. по возрастным группам)
Не подвергнуты обработке ____________________________ гол. ________________________
(указать причину
________________________________________________________________________________
и срок вакцинации)
Вакцина изготовлена __________________ биофабрикой «_______» _____________200____г.
срок годности до «_____» ____________200__г., серия _____________, госконтроль_________
Вакцина вводилась _________________________________________________ в дозе первично
(внутримышечно, подкожно)
__________________мл. повторно _______________________ мл. Место введения препарата
дезинфицировалось __________________________. Стерилизация шприцов, игл проводилась
(указать чем)
кипячением в течении _____________ мин. Израсходовано вакцины ______л (мл), ваты ____
спирта _______________г. Остаток вакцины в количестве _______________ мл. обезвредили
кипячением в течение ______________ минут.
Контроль за привитыми животными возложить на
________________________________________________________________________________
(должность, Ф.И.О.)

Подписи:











Примечание: если предусмотрено наставлением, к акту прилагается опись привитых животных.

ОПИСЬ ___________________________________________________________________________
(вид животного)
________________________________________________________________________________
(название хозяйства)
подвергнуто профилактической вакцинации против ___________________________________

(название болезни)
«______» __________________________ 200____г.
( дата)

Инвентарный номер
Пол
Возраст
Ф.И.О.
доярки или владельца животного












































































































































Кутовій штамп Д О Д А Т О К 1
підприємства Форма супровідного листа
до патологічного матеріалу




До ___________________________________ державної лабораторії ветеринарної медицини
Адреса:_________________________________________________________________________
При цьому направляється для ______________________________________________________
(вид досліджень)
патологічний матеріал (зазначити який) _____________________________________________
________________________________________________________________________________
від ________________________________ , що належить ________________________________
(вид і вік тварини)
________________________________________________________________________________
(господарство, ферма, відділок, прізвище власника тварини)
Дата захворювання (тварин, птиці, бджіл, риб, звірів) __________________________________
________________________________________________________________________________
Дата падежу _____________________________________________________________________
Клінічна картина хвороби _________________________________________________________
________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________
Дані патологоанатомічного розтину _________________________________________________
________________________________________________________________________________
Передбачуваний діагноз __________________________________________________________
Дата направлення матеріалу _______________________________________________________
За проведені дослідження оплату гарантуємо. Наш рахунок ____________________________
________________________________________________________________________________


Директор (голова) підприємства
____________________________ ____________
(посада) (підпис)

Головний лікар ____________
(підпис)
М.П.
................................................................................................................................................................


Вывод:_________________________________________________________________________
____________________________________________________________________________________
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·____________________________________________

Дата ____________________ Подпись преподавателя __________________________________



Практическое занятие №3.
Тема: Сибирская язва.
Цель занятия: Изучение правил взятия патологического материала. Изучение биопрепаратов применяемых при сибирской язве. Проведение эпизоотологического обследования хозяйства, неблагополучного по сибирской язве.
Литература: И.А. Бакулов. Практикум по эпизоотологии с микробиологией с. 110 – 120.
Задание № 1. Изучить правила взятия и пересылки пат. материала для исследования.
Задание № 2. Бактериологическое исследование на сибирскую язву.
Задание № 3. Изучить методику. Изучить биопрепараты, применяемые при профилактической и вынужденной иммунизации.
Задание № 4. Изучить методику проведения эпизоотического обследования хозяйства.
Задание № 5. Ознакомиться с инструкцией по профилактике и ликвидации болезни.

Методика выполнения.
Задание № 1.
Взятие и пересылка патологического материала для исследования. При подозрении на сибирскую язву патологический материал немедленно направляют в лабораторию для исследования. От трупа животного берут кровь из сосудов уха или из других периферических сосудов. Чтобы кровь не попала на землю, подкладывают ванночку или лист железа. Место надреза тщательно дезинфицируют, а после взятия крови прижигают огнем или раскаленным металлическим предметом. Надрезают сосуд стерильным инструментом. Кровь на предметное стекло наносят толстой каплей или толстым слоем, высушивают на воздухе (не фиксировать!). Из крови каждого павшего животного готовят 2 – 4 мазка; складывают их попарно (кровью внутрь), проложив между ними отрезки спичек; тщательно упаковывают в полиэтиленовую пленку или пергаментную бумагу, перевязывают шпагатом, упаковывают в металлический, затем в деревянный ящик и опечатывают.
В лабораторию можно посылать ухо павшего животного, отрезанное с той стороны, на которой лежал труп. Перед взятием ухо перевязывают двумя лигатурами у основания и отрезают между перевязками. Место разреза прижигают раскаленным металлическим предметом. Упаковку уха для пересылки производят, как описано выше.
Подозрения на сибирскую язву у свиней чаще всего возникает во время вскрытия или ветсаносмотра туши при наличии припухлости и воспалительных явлений в области глотки и гортани. Дальнейшее вскрытие или ветсаносмотр немедленно прекращают, для исследования берут участки отечной соединительной ткани, заглоточные и брыжеечные лимфоузлы, а также кусочки селезенки. Упаковывают этот материал в марлю или полотно, пропитанное 3%-ным раствором фенола, обертывают пергаментной бумагой, пленкой или клеенкой и помещают в стеклянный сосуд (лучше с притертой пробкой). Пробку заливают сургучом или парафином, сосуд упаковывают в металлический или деревянный ящик, перевязывают его шпагатом и опечатывают.
Для исследования на сибирскую язву кожевенного сырья посылают кусочки кожи размером 10*10.
На взятый патологический материал оформляют сопроводительный документ.

Задание № 2.
Бактериоскопическое исследование на сибирскую язву. При поступлении материала в лабораторию сразу же проводят бактериоскопию мазков крови и на основании результатов дают предварительный ответ. Мазки из подозрительного материала окрашивают по Граму и на капсулы (по Михину, Ольту и другими способами). Сибиреязвенная бацилла окрашивается по Граму положительно. В мазках из крови или селезенки павшего животного обнаруживают прямые палочки с обрубленными концами и с капсулами. Расположены они одиночно, попарно или короткими цепочками. В мазках из культур палочки имеют слегка закругленные концы. Могут также образовываться длинные нити бацилл.


Задание № 3.
Прививки животных против сибирской язвы. Различают профилактические и вынужденные прививки.
П р о ф и л а к т и ч е с к и е п р и в и в к и рекомендуется проводить один раз в год в период наилучшего физиологического состояния организма всем восприимчивым животным старше одного года во всех стационарно-неблагополучных и угрожаемых пунктах. Вновь введенные в эти пункты не привитые животные до выпуска их в общее стадо должны быть вакцинированы. прививки разрешается проводить только ветеринарным врачам и фельдшерам. Обязательна точная регистрация привитых животных с учетом результатов, для чего составляют опись всех животных, где указывают также характер осложнений, если таковые наблюдались.
Против сибирской язвы животных в настоящее время прививают жидкой и сухой вакциной из штамма 55-ВНИИВВиМ. Иммунитет при этом наступает через 10 дней и длится не менее 12 мес. Вводят вакцину строго подкожно. Молодняк, не достигший 3-месячного возраста, вакцинировать не разрешается. Овцам и козам вакцину вводят в область средней трети шеи или в бесшерстный участок внутренней поверхности бедра или грудной стенки в дозе 0,5 мл. лошадям, КРС, оленям, верблюдам, ослам и пушным зверям всех возрастов вводят вакцину в средней трети шеи в объеме 1,0 мл, а свиньям – также в дозе 1,0 мл в области внутренней поверхности бедра или за ухом. Кожу на месте инъекции дезинфицируют спиртом или 3%-ным фенолом.
Профилактические прививки нельзя проводить в хозяйствах при наличии острых инфекционных болезней животных. Не разрешается также вакцинировать животных с повышенной температурой тела. Слабых, истощенных и в последний месяц беременности. Допрививку таких животных проводят после их выздоровления. Во избежании осложнений не рекомендуется прививать животных в жаркое время года, особенно в условиях дефицита питьевой воды, а также в холодную дождливую погоду. После введения вакцины животных следует оберегать от переохлаждения и утомительных перегонов. Рабочих лошадей и волов освобождают от работы на 5 дней.
Ягнят и козлят иммунизируют первый раз в 3-месячном возрасте (период отбивки от маток) и повторно в 9 мес. Телятам вакцину вводят первый раз в 3-месячном возрасте и повторно через 6 мес; жеребятам – первый раз в 9 мес (в случай вынужденной прививки – с 3-месячного возраста), затем вакцинируют как взрослых. Свиней вакцинируют с 3-месячного возраста за 14 дней до выгона на пастбище или перевода в летние лагеря. Верблюдов, ослов, мулов, оленей и пушных зверей всех возрастов иммунизируют, начиная с 3-месячного возраста, один раз в год.
Запрещается применять вакцину из штамма 55-ВНИИВВиМ одновременно с другими биологическими и химическими препаратами. За 10 дней до вакцинации в течение 10 дней после нее не рекомендуется подвергать животных обработкам против других инфекционных и инвазионных болезней и накожных паразитов.
Через сутки после иммунизации на месте инъекции вакцины возможно появление незначительной припухлости (реакции на вакцину), исчезающей через 2 – 3 сут. У некоторых животных возможно повышение температуры тела: у животных с пониженной резистентностью – поствакцинальные осложнения: высокая температура, отеки и ухудшение общего состояния. Таких животных надо немедленно выделить из стада и оказать им лечебную помощь. Наблюдение за привитыми животными должно длиться не менее 10 сут.
В ы н у ж д е н н ы е п р и в и в к и проводят при появлении сибирской язвы в неблагополучных хозяйствах в любое время года. Не разрешается вводить вакцину больным животным с повышенной температурой, их надо изолировать и лечить. Допрививку таких животных проводят после их выздоровления. Вынужденные вакцинации носят различный характер: 1) прививка противосибиреязвенной сывороткой с последующим введением вакцины (делают только животным, бывшим в непосредственном соприкосновении с больными или павшими животными); прививка одной вакциной (без сыворотки).
Противосибиреязвенную сыворотку используют с предохранительной или лечебной целью. Вводят подкожно в дозах (мл):

Вид животного С предохранительной целью С лечебной целью
Лошади и верблюды 15-20 100-200
Взрослый КРС 15-20 100-200
Овцы, козы, телята, свиньи 8-10 50-100
У животных, которым введена сыворотка, иммунитет сохраняется до 14 дней. С лечебной целью сыворотку можно вводить внутривенно, КРС – внутрибрюшно в область голодной ямки.

Противосибиреязвенный глобулин – комплекс белковых фракций, полученный из гипериммунной противосибиреязвенной сыворотки. Применяют с профилактической и лечебной целями подкожно в дозах (мл):

Вид животного С предохранительной целью С лечебной целью
Лошади и верблюды 6-7,5 40-80
Взрослый КРС и олени 6-7,5 40-80
Овцы, козы, телята, свиньи 3-4 20-40

Вводят аналогично противосибиреязвенной сыворотке. У привитых животных иммунитет сохраняется до 14 дней.
Задание № 4.
Эпизоотологическое обследование неблагополучного хозяйства. Краткая примерная схема эпизоотологического обследования неблагополучного по сибирской язве хозяйства (пункта): 1) наименование хозяйства, пункта; 2) количество животных (по видам); 3) размещение, содержание, уход, кормление, водопой, эксплуатация животных; 4) откуда поступает скот для комплектования хозяйства; 5) связь с соседними пунктами и их благополучие по заразным болезням; 6) было ли данное хозяйство благополучным ранее по заразным болезням; 7) был ли поставлен диагноз и какими методами; 8) характеристика данной вспышки заразной болезни: когда появились первые случаи болезни; вид пораженных животных; предполагаемые источники возбудителя инфекции; как протекала болезнь в стаде ( по дням и месяцам); 9) противоэпизоотические мероприятия, проведенные в хозяйстве с момента возникновения болезни до дня обследования; их эффективность; 10) заключение.

Задание № 5.
План мероприятий по ликвидации инфекционной болезни составляют по следующей форме:

№
п/п
Наименование
мероприятия
Время
выполнения
Ответственный
за выполнение
Кто
контролирует
Примечание


Примерные вопросы, которые нужно отразить в плане мероприятий по ликвидации болезни: 1) меры по выявлению и устранению источника возбудителя инфекции и путей заноса его в хозяйство; 2) организация карантинно-ограничительных мероприятий, предусмотренных инструкцией при этой болезни; 3) когда и какие исследования животных должны проводиться; 4) изоляция больных и подозрительных по заболеванию животных, лечение больных; 5) проведение прививок; 6) сроки проведения механической очистки и дезинфекции; 7) закрепительные мероприятия перед снятием карантина.






Отчёт
Задание №1

Вид пат. материала
Методика отбора






































Задание №2

Метод окраски
Микрокартина (рисунок)







































- оформить сопроводительный документ на пат. материал при подозрении на сибирскую язву
___________________
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
3

Название биопрепарата
Метод и место введения
Разведение биопрепарата
Вид животного
Доза
на 1 гол.








































































































































































































Задание №4. Ответить на вопрос: «Что даёт специалисту проведение
эпизоотологическое обследование?
________________________________________________________________________________
__________________
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
· 5 а

Разделы инструкции
Характеристика мероприятий










































































Задание № 5 б.

Профилактические мероприятия
Мероприятия по ликвидации
































































1
2











































































































Вывод:_________________________________________________________________________
___________________________________________________
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·_____________________________________________________________________________

Дата ____________________ Подпись преподавателя __________________________________





Практическое занятие №4.
Тема: Туберкулез.
Цель занятия: Закрепить теоретический материал по теме. Ознакомление со схемой составления плана оздоровительных мероприятий в хозяйстве.
Литература: Ветеринарное законодательство Украины.
Задание № 1. Изучить требования по составлению плана оздоровительных мероприятий в хозяйстве неблагополучных по туберкулезу.
Задание № 2. Составить план ликвидации туберкулеза в хозяйстве. Задача.

Методика выполнения.
Задание № 1.
Составление плана оздоровительных мероприятий в хозяйствах, неблагополучных по туберкулезу. Конкретная основа разработки плана оздоровительных мероприятий – данные предварительного эпизоотического обследования неблагополучного хозяйства (населенного пункта). Это обследование должно выявить пути заноса возбудителя туберкулеза, определить границы возникшего эпизоотического очага, оценить характер и степень угрозы для других животноводческих хозяйств и ферм. Не менее важны данные о характере течения эпизоотического процесса в обследуемом стаде, степени распространенности болезни, условиях, способствовавших перезаражению животных.
Учитывают, что одним из наиболее частых путей заноса возбудителя туберкулеза является ввод в благополучное стадо зараженного скота. Необходимо иметь в виду и возможность заноса возбудителя животными других видов: свиньями, собаками, кошками, птицей (курами). Нередко он заносится с кормами, особенно с молочной сывороткой и обратом, получаемыми с молокоперерабатывающих предприятий. Заражение животных может произойти при выпасе на инфицированных пастбищах, при контакте с больным скотом личных подворий местных жителей. Следует иметь в виду возможность повторных вспышек туберкулеза через 2 – 3 или даже 4 года после оздоровления стада за счет молодняка, полученного в период неблагополучия и остановленного в хозяйстве. Источниками возбудителя могут быть люди, больные туберкулезом. Очень опасно скармливать животным необезвреженные пищевые отходы из больниц, туберкулезных санаториев и диспансеров.
Цели планируемых оздоровительных мероприятий – быстрая локализация эпизоотического очага, выявление и изъятие животных – источников возбудителя, обеззараживание инфицированных объектов внешней среды, предупреждение новых случаев заражения животных. Характер мероприятий определяют с учетом положений действующих инструкций и особенностей природно-хозяйственных условий и эпизоотической обстановки, сложившейся в данном районе, в данном хозяйстве.
В плане перечисляют необходимые ограничительные и оздоровительные мероприятия, указывают срок их исполнения, определяют ответственных лиц и непосредственных исполнителей.
В целях быстрой локализации эпизоотического очага предусматривают категорический запрет вывода животных неблагополучной группы в другие стада, вывоз кормов, подозреваемых в инфицировании микобактериями туберкулеза. Планируют мероприятия по приведению в должный порядок всех санитарных объектов (ограждения фермы, санпропускник, дезбарьеры, родильное отделение, карантинное помещение, навозохранилище). Предусматривают немедленную организацию обеззараживания молока, получаемого от коров неблагополучного стада.
Комплекс мероприятий, направленных на выявление и устранение источников возбудителя болезни, должен включать проведение систематических исследований скота, немедленную изоляцию и последующую сдачу на убой всех выявленных больных животных. Соответственно определяют порядок диагностических исследований скота, их масштабы, сроки туберкулинизаций. Обязательно указывают, как поступить с реагирующими на туберкулин животными (место изоляции, сроки отправки на мясокомбинат).
Важное мероприятие, направленное на предупреждение дальнейшего перезаражения животных, - текущая дезинфекция. Ее проводят систематически и обязательно после каждого очередного обследования неблагополучного поголовья. В плане оздоровительных мероприятий определяют порядок проведения дезинфекции, которая должна включать не только обработку помещений и инвентаря, но и обеззараживание навоза, а также обуви и одежды обслуживающего персонала. Обязательно и обеззараживание территории, прилегающей к животноводческим помещениям. Также в целях профилактики новых случаев заражения животных определяют порядок использования пастбищ, исключая выпас инфицированных участках.
Обязательно учитывают важность проблемы получения здорового молодняка. Предусматривают сдачу на убой всех телят, родившихся от больных коров. Заранее обеспечивают возможность изолированного выращивания молодняка, который будет получен после постановки стада на контрольное наблюдение.
Сдача больных животных не гарантирует благополучия оставшегося поголовья без проведения санитарного ремонта животноводческих помещений и других санитарных мер. Соответственно в плане оздоровительных мероприятий предусматривают вывод скота в летние лагеря и санитарный ремонт всех помещений фермы. Освободившиеся помещения очищают от навоза, снимают в стойлах старый деревянный настил, убирают 15 – 20 см грунта под полом и настилают новый пол. Очищают стены, инвентарь, оборудование. Весь скопившийся на ферме навоз вывозят в специально отведенное огражденное место и складируют в бурты. Очищают от мусора и навоза территорию фермы, выгульные площадки. Все эти виды работ отражают в плане. Предусматривают и проведение заключительной дезинфекции во всех помещениях на территории фермы с обязательной лабораторной проверкой качества дезинфекции.

Задание № 2.
Решение задачи.





























Отчёт

Задание №1

Профилактические мероприятия при туберкулёзе
Мероприятия
по ликвидации туберкулёза








































































































Вывод:_______________________________________________
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·
·___________________________________________________________________________________________________________________________________________________________

Дата ____________________ Подпись преподавателя __________________________________

Практическое занятие №5.
Тема: Бруцеллёз.
Цель занятия: Ознакомление с правилами взятия крови у с/х животных с аллергической диагностикой бруцеллёза.
Литература: И.А.Бакулов. Практикум по эпизоотологии с микробиологией с. 132 – 143.
Задание № 1. Изучить правила взятия крови у с/х животных. Оформление сопроводительного документа к пробам крови.
Задание № 2. Изучить правила применения бруцеллина для аллергической диагностики.
Задание № 3. Изучить требования к составлению плана оздоровительных мероприятий в хо-
зяйстве, неблагополучном по бруцеллёзу.

Методика выполнения.
Задание № 1.
Взятие крови у различных с/х животных, в том числе птиц. Кровь для исследования у лошадей, КРС, овец и коз берут из яремной вены в средней трети шеи иглами Боброва, Каспера или Сайковича, а у мелких животных инъекционными иглами. Существуют также приборы для взятия крови.
Инструмент перед взятием крови стерилизуют кипячением. Для каждого животного берут стерильную иглу. На месте укола шерсть выстригают, у овец можно раздвинуть ее или выстричь небольшую полоску поперек яремного желоба. Место взятия крови дезинфицируют спиртом или 3%-ным раствором фенола.
Удобнее брать кровь у КРС и лошадей с левой стороны. Помощник фиксирует животное.Оператор левой рукой зажимает яремную вену (можно перетянуть шею резиновым жгутом). После того, как яремная вена наполнится кровью и хорошо обозначится под кожей, правой рукой вводят иглу под острым углом к поверхности кожи по направлению к голове (ориентируясь на правое ухо животного). Прокладывают вначале только кожу, затем стенку вены или одновременно кожу и стенку вены. Если при этом кровь не показалась, следует слегка оттянуть иглу назад и несколько изменить ее положение.
Чтобы кровь не попала на землю, помощник держит ванночку с дезинфицирующей жидкостью непосредственно под иглой. Кровь берут в стерильные пробирки, при этом следят, чтобы она стекала в пробирку ровной струей по стенке пробирки, не пенясь.
При массовом взятии крови у овец около рабочего места делают углубление в земле (глубина 0,5 м), чтобы не нагибаться во время работы. В некоторых случаях кладут овец на возвышенность (стол. Повозку). Кровь у свиней берут из хвостовой или ушной вены. Из уха кровь берут при помощи иглы или шприца с иглой. Хвост перед взятием крови обмывают водой с мылом, дезинфицируют спиртом или 3%-ным раствором фенола. Кончик хвоста отрезают ножницами.
Кровь должна стекать строго по стенке пробирки, так как эритроциты у свиней легко гемолизируются. Кончик хвоста после взятия крови дезинфицируют настойкой йода, перевязывают или прижигают раскаленным железом. Можно наложить на кончик хвоста резиновое кольцо, отступя 1 – 1,5 см от конца хвоста.
У птиц кровь берут из вены или из гребешка.
Кровь у крупных животных берут в количестве 7 – 10 мл, у мелких животных, в т.ч. и птиц – 2 – 5 мл.
Взятую кровь на 1 – 2 ч помещают в теплое место, затем переносят в прохладное, затемненное место для отстаивания сыворотки. Если сыворотка отстоялась недостаточно, то производят так называемую обводку кровяного сгустка. Для этого проволоку длиной 18 – 20 см, сечением 1,5 – 2 мм прокалывают на пламени, остужают и ею отделяют сгусток крови от стенок пробирки. После этого пробирки вновь ставят в теплое место на один час, а затем в прохладное, затемненное место на 1 – 2 ч. Проволоку после обводки каждой пробы обмывают физраствором и прожигают на пламени.
Кровь для исследования на бруцеллёз можно отправить в лабораторию в цельном виде при условии быстрой доставки ее в лабораторию и предохранении в пути от встряхивания. В противном случае отстоявшуюся сыворотку сливают в другие пробирки и доставляют в лабораторию не позднее трех суток с момента взятия крови.
При необходимости пересылки крови на большие расстояния сыворотку консервируют 5%-ным раствором фенола, изготовленным на физрастворе, из расчета на каждые 9 мл сыворотки 1 мл раствора карболовой кислоты. Можно консервировать сыворотку порошком борной кислоты. Для этого в каждую пробирку добавляют 0,05 г борной кислоты (на кончике скальпеля).
Для отправки в лабораторию сыворотку можно высушить. С этой целью нарезают фильтровальную бумагу размером 5*5 см, на каждую бумагу наносят сыворотку в дозе 0,4 мл и высушивают в комнате при рассеяном свете. Каждую бумажку надписывают простым карандашом, завертывают в пергаментную бумагу (каждую пробу отдельно), упаковывают в конверт и посылают в лабораторию. Сухие сыворотки сохраняют свои свойства в течение 40 – 130 дней.
Пробирки с кровью или сывороткой закрывают стерильными ватными пробками. Этикетку на пробирке укрепляют резиновым кольцом. На этикетке указывают порядковый номер пробы по описи, номер и кличку животного или фамилию владельца. Пробирки разбирают и увязывают по десяткам (согласно описи), после этого упаковывают в ящики в вертикальном положении. На дно ящика кладут слой ваты или насыпают опилки. При транспортировке нужно сохранять целость пробирок, предохранять от встряхивания, а зимой от замерзания.
На взятую кровь составляется сопроводительный документ в 2-х экземплярах по узаконенной форме.
Форма сопроводительного документа к пробам крови, направляемым
для исследования на бруцеллёз
Отметка лаборатории
Дата поступления материала __________ Доставлено проб____________
Забраковано _________________
В ___________ лабораторию ветеринарной медицины
Адрес _______________________________________________________________________
При этом направляется ________ проб крови (сыворотки) от _________________________
_____________________________________________________________________________
(вид животных, наименование хозяйства, населенного пункта, района)
для серологического исследования на бруцеллёз.
Хозяйство, бригада, отара, гурт, табун ____________________________________________
(благополучное, неблагополучное, вакцинировано, указать вакцину, дату вакцинации)
Дата и результат предыдущего исследования _______________________________________
Дата взятия крови ______________________________________________________________
Список животных, от которых взята кровь для исследования
№ п/п
Наименование хозяйства, фермы, отделения, фамилия владельца животного
Пол
Возраст, масть
Инвентарный номер, кличка
Результат исследования






РА (положительная, сомнительная, отрицательная)
Титр

РСК (положительная, сомнительная, отрицательная)

Ветврач (веттехник), Ветврач, проводивший
Направляющий пробы____________ исследование___________
(подпись) (подпись)


Задание № 2.
Применение бруцеллина ВИЭВ для аллергической диагностики бруцеллёза у овец, коз и свиней. Бруцеллин вводят овцам и козам под кожу нижнего века левого глаза в дозе 0,5 мл (пальпебральная проба). Голову животного фиксируют и шприцем (емкость 5 мл) с бегунком через короткую тонкую иглу, вводят бруцеллин под кожу на 1 см ниже края века со стороны наружного –угла глаза. Животных с заболеванием глаз или густым шерстным покровом в области глаз метят и вводят им препарат в одну из хвостовых складок внутрикожно в дозе 0,2 мл.
Свиньям бруцеллин вводят внутрикожно в дозе 0,2 мл с наружной стороны ушной раковины левого (или правого) уха, ближе к его основанию. На месте инъекции образуется уплотненный бугорок размером с горошину. Кожу предварительно протирают ватой, смоченной в спирте или 3%-ном растворе борной кислоты. Шприцы перед началом работы стерилизуют кипячением. Для каждого животного используют отдельную стерильную иглу. У животных ,больных бруцеллёзом, на месте введения бруцеллина появляется воспалительная реакция в виде плотной или тестоватой припухлости обычно хорошо видимой при осмотре; у свиней, кроме того. Могут быть гиперемия, иногда кровоизлияния в виде темно-красного пятна в центре отека, у здоровых животных никаких изменений не находят.
Реакцию учитывают у овец и коз один раз через 42 – 48 ч, у свиней – 2 раза через 24 и 48 ч путем осмотра, а при неясно выраженной реакции – пальпацией места инъекции, сравнивая с кожей века другого глаза (или подхвостовой складки).
При обнаружении на месте введения препарата припухлости реакцию оценивают как положительную. При отсутствии указанных признаков реакции результат исследования считают отрицательным. Реагирующих на бруцеллин животных метят, выделяют из отары (стада) и изолируют. При исследовании овец и коз в неблагополучных по бруцеллёзу отарах (стадах) в целях более полного выявления животным, не реагировавшими на первое введение, при читке реакции бруцеллин вводят через 42 – 48 ч повторно в то же место и в той же дозе. После второго введения бруцеллина реакцию учитывают через 24 ч. всех реагирующих животных метят и изолируют. С ними поступают согласно инструкции по предупреждению и ликвидации бруцеллёза с/х животных.

Задание № 3.
Составление плана оздоровительных мероприятий в хозяйстве. Неблагополучном по бруцеллёзу. Комплексные планы мероприятий по оздоровлению поголовья животных в хозяйствах (населенных пунктах), неблагополучных по бруцеллёзу, разрабатывают комиссионно. С участием представителей государственной ветеринарной службы, местных органов санитарно-эпидемиологической службы, специалистов и руководителей неблагополучных хозяйств (владельцев животных). Конкретная база для разработки плана – результаты предварительного эпизоотологического и эпидемиологического обследования хозяйства (населенного пункта). Главные цели обследования – выяснение особенностей возникшего эпизоотического очага, выявление источников и путей заноса возбудителей бруцеллёза, путей распространения болезни в условиях данного хозяйства ( населенного пункта). Уточняется динамика эпизоотического процесса, дается оценка степени распространенности и характеру течения болезни в обследуемом стаде, выявляют условия, способствующие перезаражению животных и создающие опасность заражения людей. Результаты эпизоотологического обследования позволяют уточнить границы эпизоотического очага, определить характер и степень угрозы для других животноводческих хозяйств, ферм, населенных пунктов данного района.
При проведении обследования учитывают, что одной из основных причин возникновения новых очагов бруцеллёза является ввод в благополучные стада скрытых бруцеллоносителей, особенно иммунотолерантного молодняка их хозяйств, которые ранее были неблагополучными. Активными источниками возбудителя инфекции могут стать зараженные быки, бараны, хряки-производители. Опасны контакты с неблагополучным поголовьем на пастбищах, при водопое, на скотопрогонных трассах, возможно заражение при использовании кормов, заготовленных в неблагополучной местности. Известна опасность молодняка, полученного от больных животных. После возникновения первых случаев бруцеллёза перезаражение животных активизируется в период массовых отелов (ягнения, опоросов), поскольку при абортах и после них имеет место особенно обильное выделение бруцелл во внешнюю среду.
Соответственно при эпизоотологическом обследовании уточняют порядок комплектования стада, выясняют, откуда и когда поступали в хозяйство животные, подвергались ли они профилактическому карантинированию и контрольным исследованиям. При этом учитывают эпизоотическую обстановку в соседних хозяйствах и районе в целом, в других районах, с которыми поддерживались хозяйственно-экономические связи. Выясняют порядок первичной переработки и реализации продуктов животноводства (в первую очередь молочной продукции), получают данные о вывозе животных и животноводческой продукции, о вывозе заготовленных в хозяйстве кормов (куда и когда).
Выясняют состояние кормовой базы хозяйства, организацию заготовки кормов (их происхождение), порядок использования пастбищ и водопоев, состояние пастбищ и водоисточников. Не менее важны сведения о системе содержания животных (общее, индивидуально-стойловое, пастбищное, лагерное, стойлово-пастбищное), системе выращивания молодняка, состоянии животноводческих помещений, наличии ветеринарно-санитарных объектов и их состоянии, системе уборки и обеззараживания навоза и сточных вод, уборки последов, абортированных плодов, проведении дезинфекционных работ.
Получают и анализируют данные о динамике эпизоотического процесса: даты и методы исследований животных, число выявленных случаев болезни по половозрастным группам скота, число и даты учтённых абортов бруцеллёзной этиологии и других клинических проявлений болезни, данные о передержке больных животных в общем стаде и т.д.
Использование комплекса данных, полученных при эпизоотологическом обследовании, их анализ позволяют конкретизировать основные элементы плана оздоровительных мероприятий, которые должны быть направлены на обеспечение купирования эпизоотического очага (предупреждение выноса возбудителя), на выявление и немедленное устранение источников возбудителя (больных животных), исключение дальнейшего перезаражения поголовья и риска заражения людей, обеспечение уничтожения возбудителя в объектах внешней среды.
Перечень и основное содержание этих мероприятий определены соответствующими директивными документами (инструкции и наставления), но необходим учёт местных природных и хозяйственно-экономических условий, учёт особенностей эпизоотической обстановки, сложившейся в неблагополучном хозяйстве и данном районе.
В план включают все необходимые ограничительные и оздоровительные мероприятия с обязательным указанием срока исполнения, ответственных лиц и непосредственных исполнителей.
В целях быстрого купирования возникшего эпизоотического очага предусматривают полный запрет на вывод и ввод восприимчивых животных, провоз прогон животных по территории неблагополучного хозяйства, прекращение заготовки грубых кормов для вывоза в другие хозяйства и районы. Предусматривают также немедленную изоляцию и последующую сдачу на убой всех животных, реагировавших при исследовании на бруцеллёз, абортировавших или имеющих другие клинические признаки болезни. Отдельными пунктами плана вводят учёт всех случаев абортов, преждевременных родов, задержание последа, проведение отела (окота) в оборудованных отдельных помещениях. Определяют порядок уничтожения абортированных плодов, последов, проведение дезинфекции.
Предусматривают порядок переработки и обеззараживания молока и другой продукции животноводства. При оздоровлении неблагополучного стада с использованием противобруцеллезных вакцин определяют сроки вакцинации, ревакцинации и контрольных исследований. В случае сдачи всего неблагополучного поголовья на убой уделяют главное внимание санации животноводческих помещений, прифермской территории, пастбищ, уборке и обеззараживанию навоза.
Очень важны организационно-хозяйственные мероприятия. Такие, как строительство и реконструкция необходимых животноводческих, бытовых помещений и ветеринарно-санитарных объектов, приобретение спецодежды, спецобуви, предметов личной гигиены, дезсредств. Обязательно предусматривают медико-санитарные мероприятия по профилактике заражения людей.







































Отчёт

Задание №1 а)

Вид животного
Инструменты для взятия крови
Место
взятия
Количество крови
Средство для консервирования

























































































































































































































На взятую кровь составляется сопроводительный документ в 2-х экземплярах по узаконенной форме.
Форма сопроводительного документа к пробам крови, направляемым
для исследования на бруцеллёз
Отметка лаборатории
Дата поступления материала __________ Доставлено проб____________
Забраковано _________________
В ___________ лабораторию ветеринарной медицины
Адрес _____________________________________________________________________________________________
При этом направляется ________ проб крови (сыворотки) от _______________________________________
___________________________________________________________________________________________
(вид животных, наименование хозяйства, населенного пункта, района)
для серологического исследования на бруцеллёз.
Хозяйство, бригада, отара, гурт, табун ____________________________________________________
(благополучное, неблагополучное, вакцинировано, указать вакцину, дату вакцинации)
Дата и результат предыдущего исследования _________________________________________________________
Дата взятия крови ________________________________________________________________________________
Список животных, от которых взята кровь для исследования
№ п/п
Наименование хозяйства, фермы, отделения, фамилия владельца животного
Пол
Возраст, масть
Инвентарный номер, кличка
Результат исследования






РА (положительная, сомнительная, отрицательная)
Титр

РСК (положительная, сомнительная, отрицательная)


















































































Ветврач (веттехник), Ветврач, проводивший
Направляющий пробы____________ исследование___________
(подпись) (подпись)


Задание №2
Вид животного
Место введения
Доза, мл
Время учёта
Результат







































































































Задание №3

Этапы планирования
Мероприятия








































































































Вывод:_________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________

Дата ____________________ Подпись преподавателя __________________________________



Лабораторная работа № 3

Тема: Пастереллезы.
Цель занятия: Ознакомление с правилами взятия пат. материала для исследования на пастереллез; с биопрепаратами применяемыми при пастереллезе.
Литература: И.А.Бакулов. Практикум по эпизоотологии с микробиологией с. 123 – 125.
Задание № 1. Изучить правила взятия и исследования патологического материала на пастереллёзы.
Задание № 2. Ознакомиться с биопрепаратами применяемыми при пастереллезе.
Методика выполнения.
Задание № 1.Для бактериологического исследования от больных животных отбирают кровь, стерильно взятую из вены в пробирку; от трупа животного – кровь из сердца, кусочки паренхиматозных органов и трубчатую кость.
Пастереллы, обнаруживаемые в мазках из органов павшего животного, имеют форму коротких палочек с закругленными концами. В культурах микроб может иметь различную форму, иногда в виде дипло- или стрептококков. По Граму окрашивается отрицательно. При окраске леффлеровской метиленовой синькой с последующей обработкой в течение нескольких секунд 1%-ным раствором уксусной кислоты хорошо заметно биполярное окрашивание пастерелл (по полюсам окрашиваются интенсивно, в центре – слабо или совсем не окрашиваются). Биполярность обычно наблюдается в препаратах из крови и селезенки павших животных; в мазках из культур биполярность не отмечается. Рост на простых питательных средах: МПА – в первые сутки роста наблюдается мелкие круглые прозрачные колонии; МПБ – легкое равномерное помутнение, при встряхивании поднимается слизистый осадок в виде косички.

Задание № 2.
Б и о п р е п а р а т ы , п р и м е н я е м ы е п р и п а с т е р е л л е з е .
Вакцины. П р е ц и п и т и р о в а н н а я ф о р м о л в а к ц и н а п р о т и в п а с т е р е л л е з а о в е ц и с в и н е й. Применяют для предохранительных и вынужденных прививок. Вакцинируют животных, начиная с 2-месячного возраста, через 15 дней после последнего случая заболевания или падежа животных в хозяйстве. Прививке подлежат животные с нормальной температурой тела, не имеющие клинических признаков болезни. Вакцину вводят подкожно двукратно с интервалом 12 – 15 дней в дозах (мл):

Вид животного Первый раз Второй раз
Взрослые овцы и и свиньи 5 8
Ягнята и поросята 3 5

Иммунитет сохраняется до 5 – 6 мес.
К о н ц е н т р и р о в а н н а я п о л и в а л е н т н а я ф о р м о л в а к ц и н а п р о т и в п а - р а т и ф а, п а с т е р е л л е з а и д и п л о к о к к о в о й с е п т и ц е м и и п о р о с я т (ППД). Применяют для прививок поросят и супоросных свиноматок с профилактической целью в хозяйствах, неблагополучных по сальмолеллезу, пастереллезу и диплококковой септицемии. Вакцину вводят внутримышечно. Поросят вакцинируют двукратно в 20 – 30-дневном возрасте с интервалом 5 – 7 дней в дозе 3 – 4 мл для первой и 4 – 5 мл для второй прививки. За 7 – 10 дней до отъема их ревакцинируют однократно в дозе 4 – 5 мл. Супоросных свиноматок вакцинируют трехкратно за 35 – 40, 25 – 30 и 15 – 20 дней до опороса в дозе 5 – 10 мл.
Э м у л ь г и р о в а н н а я в а к ц и н а п р о т и в п а с т е р е л л е з а п т и ц. Применяют в благополучных, угрожаемых и неблагополучных по пастереллезу хозяйствах. Прививают кур с 3-месячного, уток – с 1,5-месячного возраста однократно в дозе 1,5 мл независимо от вида и возраста птицы. Вакцину вводят подкожно в области верхней трети шеи. Иммунитет сохраняется до 6 мес, после чего рекомендуют ревакцинацию.
Кроме того, для иммунизации птиц могут быть использованы п е р в а я и в т о р а я в а к ц и н ы п р о т и в п а с т е р е л л е з а к у р и у т о к (изготовленные по методике Краснодарской НИВС), с у х а я а в и р у л е н т н а я в т о р а я в а к ц и н а и з п а с т е р о в с к о г о ш т а м м а п р о т и в п а с т е р е л л е з а п т и ц, э м у л ь с и н в а к ц и н ы п р о т и в п а с т е р е л л е з а к у р, и н д е е к, у т о к и г у с е й. Прививки этими вакцинами проводят в соответвии с наставлениями по их применению.
А с с о ц и и р о в а н н а я и н а к т и в и р о в а н н а я в а к ц и н а п р о т и в п а с т е р е л л е з а и в и р у с н о й г е м о р р а г и ч е с к о й б о л е з н и к р о л и к о в. кроликов прививают с 1,5-месячного возраста. Вакцину вводят подкожно в область внутренней поверхности бедра двукратно с интервалом 7 – 10 дней в объеме по 1,5 см 3. Длительность иммунитета 12 мес. Крольчих вакцинируют в любой период беременности.
Сыворотка против пастереллеза КРС, буйволов, овец и свиней. С профилактической целью применяют подкожно в дозах (мл): поросятам, буйволятам, телятам, ягнятам 10 – 20; свиньям, овцам, буйволам и КРС 30 – 40. С лечебной целью сыворотку применяют в двойной дозе внутримышечно или внутривенно.






































Отчёт

Задание №1 а).

Отбор пат. материала от больного животного
Отбор пат. материала от трупа






































Задание №1 б).

Бактериологические исследования
Рост на питательных средах

Форма возбудителя в мазках из органов:






Форма возбудителя в мазках из культур:







Биполярность в мазках из органов:







Биполярность в мазках культур:
МПА-




















МПБ-






































































Задание №2

Название биопрепарата
Вид и возраст животных
Кратность введения
Доза
Место и метод введения
Продолжительность иммунитета




























































































































































































































Вывод:_________________________________________________________________________
________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________

Дата ____________________ Подпись преподавателя __________________________________



Лабораторная работа № 4

Тема: Туберкулез.
Цель занятия: Ознакомиться с правилами взятия и пересылки материала в лабораторию.
Изучение инструкции по аллергической диагностике туберкулеза.
Литература: И.А.Бакулов. Практикум по эпизоотологии с микробиологией с.126 – 131.
Задание № 1. Изучить правила взятия и пересылки материала в лабораторию ветеринарной
медицины для исследования на туберкулез.
Задание № 2. Изучить инструкцию по проведению аллергического метода диагностики ту-
беркулеза.
Задание № 3. Ознакомиться с актом на проведение туберкулинизации.

Методика выполнения.
Задание № 1.
Для подтверждения результатов клинического, аллергического, серологического и патоморфологического методов диагностики туберкулеза необходимо бактериологическое исследование. Его результаты особенно важны, когда при постановке первичного диагноза у убитых животных не обнаруживают изменений, свойственных туберкулезу, или они нечетко выражены. Микобактерии можно обнаружить в различном материале, полученном от животных, а также в пробах из объектов внешней среды. От убитых или павших животных в лабораторию направляют лимфоузлы, кусочки органов с подозрительными на туберкулез изменениями. От животных в случае необходимости берут пробы молока, мокроты, мочи, фекалий, спермы, истечений из влагалища. Пробы доставляют в лабораторию в свежем виде в стерильной посуде. Кусочки органов можно консервировать в 30%-ном стерильном глицериновом растворе.
При подозрении на туберкулез легких у КРС берут пробы мокроты, собирая ее в кювету или на марлевую салфетку во время искусственно вызванного кашля. При подозрении на туберкулез вымени берут для исследования 150 – 250 мл молока из всех четвертей вымени (из пораженной четверти – побольше). Учитывают, что первые порции молока непригодны для исследования. Их сдаивают в отдельную посуду. Мочу (200 – 500 мл) берут с помощью катетера или собирают при мочеиспускании. Фекалии (30 – 50 г) берут из прямой кишки; истечения из влагалища – с помощью стерильных ватных тампонов или влагалищной ложки.

Задание № 2.
Туберкулизация животных разных видов. Для аллергической диагностики туберкулеза применяют очищенный туберкулин для млекопитающих, выпускаемый в жидком или сухом виде, и очищенный туберкулин для птиц. Который выпускают только сухим. Перед применением сухой туберкулин растворяют, а жидкий – разводят в специальном растворителе, прилагаемом к каждому флакону с туберкулином. Для диагностики туберкулеза у рогатого скота и птиц при первичной постановке диагноза и для контроля за благополучием в хозяйствах, где реакции на туберкулин обусловлены сенсибилизацией животных (в том числе кур) атипичными микобактериями, применяют симультанную аллергическую пробу. Она заключается в одновременном введении двух аллергенов: очищенного комплексного аллергена из атипичных микобактерий (КАМ).
Туберкулизации подвергают КРС, яков, лошадей, буйволов, свиней, овец, коз, собак, кошек – с 2-месячного возраста; верблюдов – с 12 мес; маралов, оленей, пушных зверей и птиц – с 6 мес.
Коров (нетелей), буйволиц, ячих, верблюдиц исследуют независимо от периода беременности; коз, овец, свиноматок, кобылиц, ослиц, сук, самок пушных зверей – не ранее месяца после родов. Не разрешается исследовать животных в течение 3 недели после вакцинации или обработки против гельминтов.
Для внутрикожного введения туберкулина используют безигольные инъекторы или шприцы вместимостью 1 – 2 мл с бегунком и иглами для внутрикожных инъекций (отдельная игла для каждого животного). Собакам, пушным зверям, кошкам и птицам туберкулин вводят только шприцем с иглой. Для нанесения туберкулина на конъюнктиву применяют глазные пипетки. Все эти инструменты используют только для туберкулизации. До и после использования шприцы, иглы, пипетки стерилизуют кипячением в течение 10 мин в дистиллированной или кипяченой воде (без добавления дезсредств).
О д н о к р а т н а я в н у т р и к о ж н а я т у б е р к у л и н о в а я п р о б а. Ее применяют у КРС благополучных хозяйств, а также у свиней, верблюдов, оленей, маралов, буйволов, собак. Кошек, пушных зверей (кроме норок), птиц (кроме фазанов).
Туберкулин вводят в дозе 0,2 мл КРС (кроме быков-производителей, буйволам, зебувидным в области средней трети шеи; быкам-производителям в подхвостовую складку; верблюдам в кожу брюшной стенки в области паха на уровне горизонтальной линии от седалищного бугра; свиньям с наружной поверхности уха, отступая 2 см от его основания (2 – 3-месячным поросятам можно вводить аллерген безигольным инъектором в кожу поясницы в 5 – 8 см от позвоночника); овцам и козам под кожу нижнего века; собакам и пушным зверям (кроме норок) в области внутренней поверхности бедра4 норкам интрапальпебрально (в верхнее веко); кошкам в области внутренней поверхности уха; курам в кожу бородки; индейкам в подчелюстную сережку; гусям и уткам в подчелюстную складку.
Перед введением туберкулина волосы на месте инъекции выстригают (перья выщипывают), кожу обрабатывают 70%-ным этиловым спиртом.
Учитывают и оценивают реакцию у КРС, буйволов, зебувидных, яков, верблюдов, маралов и пятнистых оленей через 72 ч; у коз, овец, свиней, собак, кошек, пушных зверей через 48 Ч; у птиц через 30 – 36 ч.
У животных, инфицированных микобактериями, реакция на туберкулин выражается возникновением разлитой припухлости – тестоватой или мягкой и обычно не имеющей четких границ. Это сопровождается гиперемией и болезненностью кожи. Но в некоторых случаях образовавшаяся припухлость плотная, безболезненная, отчетливо контурированная.
При обнаружении указанных изменений у КРС (кроме быков-производителей), буйволов, зебувидных, яков, верблюдов, пятнистых оленей и маралов измеряют кутиметром толщину кожной складки и сравнивают ее с толщиной складки неизменной кожи вблизи места введения туберкулина. Животных перечисленных видов считают реагирующими на туберкулин при утолщении кожной складки на 3 мм. Быков-производителей, овец, коз, свиней, кошек, пушных зверей и птиц считают реагирующими при образовании припухлости в месте введения туберкулина.
Д в у к р а т н а я т у б е р к у л и н о в а я п р о б а. Применяют КРС, буйволам, зебувидным, якам, верблюдам, маралам, пятнистым оленям в неблагополучных по туберкулезу хозяйствах. В день учета реакции животных, не реагировавших на первое введение аллергена в дозе 10 000 МЕ в 0,2 мл, вводят туберкулин повторно – в той же дозе и в то же место. Реакцию учитывают через 24 ч. животных считают реагировавшими при утолщении кожной складки на 5 мм и более.
О ф т а л ь м о п р о б а. Применяют при исследовании лошадей и КРС. 3 – 5 капель туберкулина наносят на конъюнктиву глаза при оттянутом нижнем веке. Через 5 – 6 дней вводят туберкулин повторно. Реакцию учитывают через 6, 9, 12 и 24 ч и после второго введения аллергена через 3, 6, 9 и 12 ч. Животных считают реагирующими при образовании слизисто-гнойного или гнойного секрета, накапливающегося в конъюнктивальном мешке или вытекающего в виде шнура из внутреннего угла глаза. Конъюнктива при этом гиперемирована и отечна.
С и м у л ь т и в н а я а л л е р г и ч е с к а я п р о б а применяется в условно благоприятных на туберкулез крупного и мелкого рогатого скота и кур в хозяйствах при первичной постановке диагноза, а также в благоприятных хозяйствах в случае, если у животных реакции на туберкулин вызваны атипичными микобактериями или кислотоустойчивыми сапрофитами.
Туберкулин и КАМ вводят с противоположных сторон тела строго симметрично млекопитающим животным 0,2 мл, птице – 0,1 мл; коровам – внутрикожно в области средней трети шеи, быкам и волам – внутрикожно в подхвостовые складки; козам, овцам – в толщину нижних век, курам – в бородку.
Учитывают результаты у КРС через 72 ч, у овец и коз – через 48 ч, у кур – через 30 – 36 ч. Животных считают реагирующими на аллергены: коров – при утолщении кожной складки на 2 мм и более; быков, волов, овец, коз и кур – при образовании припухлости, степень которой оценивается в крестах.
Достоверность различий в интенсивности реакции у животных на туберкулин и КАМ определяют по таблице (Ветеринарное законодательство, 1981, т.III, с.222 – 223). Достоверно большая интенсивность реакции на туберкулин указывает на заражение животных туберкулезом, при достоверно выраженной реакции на КАМ считают эти реакции обусловленными другими причинами.
В н у т р и в е н н а я т у б е р к у л и н о в а я п р о б а. Ее разрешается проводить только у взрослого КРС, за исключением коров (нетелей) за месяц до отела и месяц после него. Нельзя исследовать животных с температурой тела выше 39,5*С. туберкулин для млекопитающих в стандартном разведении вводят внутривенно в дозе 1 мл на 100 кг живой массы. Через 3, 6, 9 ч проводят термометрию. Реагирующими считаются животные с повышением температуры тела на 1*С и более максимальной нормальной, т.е. 40,5*С и выше.

Задание № 3.
На каждую туберкулинизацию составляют акт, в котором указывают время и место проведения работы (хозяйство, населенный пункт, отделение, ферма), виды исследованных животных и их количество по половозрастным и технологическим группам. Указывают метод исследования, характеристику использования аллергена, обобщают результаты исследования и формулируют предложения в отношении дальнейших действий владельцев животных и ветеринарных специалистов. К акту прилагают опись реагировавших животных с указанием их инвентарных номеров или кличек, пола, возраста, величины утолщения кожной складки.




























Отчёт

Задание №1

Для прижизненной диагностики
Для посмертной диагностики






































Задание №2

Вид исследования
Вид животных
Возраст и физиология состояния
Место введения
Доза,
мл.
Время учёта

Внутрикожная туберкулёзная проба:
Однократная













Двукратная










































































































































































































1
2
3
4
5
6










Офтальмопроба












Симультанная аллергическая проба














Внутривенная туберкулиновая проба






























































































































































































































































































































































Задание №3

АКТ
о проведении туберкулинизации
«________» _________________________ 200____г.
________________________________________________________________________________
(наименование хозяйства)
Мы, нижеподписавшиеся ____________________________________________________
(должность, Ф.И.О.ветспециалистов и представ. хозяйства)
_______________________________________________________________________________
составили настоящий акт о том, что с_________________ по ____________________ 200___г.
проведены клинический осмотр и туберкулинизация КРС, находящегося в отделении (бригаде) №_____________. На день исследования в отделении было _______________ голов
в т.ч. коров __________________________, тёлок и нетелей ____________________________.
________________________________________ Клинические признаки туберкулёза животных не обнаружены.Исследование проводилось внутрикожной пробой сухим туберкулином, изготовленным _______________ фабрикой _____________ 200_____г.
срок годности ____________ года, серия ___________, госконтроль ____________. Растворитель: серия _______________, госконтроль _________________.
Туберкулин вводился _______________________________________________________
__________________ в дозе ___________________. Шерсть на место введения аллергена выстригали, кожу дезинфицировали 70 градусным гидролизным (этиловым) спиртом. Туберкулизацию проводили ветврачи: ______________________________________________
(Ф.И.О.)
Учёт реакции проводили через – час после введения туберкулина ветврачи: _______________
________________________________________________________________________________
(Ф.И.О.)
Результаты исследований: реагирующих на туберкулин животных не выявлено
или выявлено реагирующих .. голов, указать их клички или инвентарные номера; если
________________________________________________________________________________
выделено более 5 реагирующих – прилагается их опись к акту
________________________________________________________________________________
Реагирующих животных перевели в изолятор, из них подвергнуто диагностическому убою ___________ голов. Помещение, из которого выделены реагирующие животные, подвергнуто дезинфекции ________________________________________________________
(указать каким дезраствором)
Израсходовано: туберкулина __________доз, растворителя __________мл, спирта_______ гр.,
ваты ________ гр.
Приложение: 1. Опись животных, не подвергавшихся исследованиям.
2. Опись реагирующих на туберкулин животных.





Подписи:








Опись __________________________________________________________________________
(вид животного)
________________________________________________________________________________
(название хозяйства)
подвергнуто туберкулинизации «_______» ___________________200___г.
(дата)
________________________________________________________________________________

Инвентарный номер
Пол
Возраст
Результат исследования (не реагировало, реагировало)
Утолщение кожной складки (мм) (отмечают только у реагирующих животных)























































































































































Главный ветврач хозяйства ____________________________________
(фамилия, инициалы)

Вывод:_________________________________________________________________________
________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________
Дата ____________________ Подпись преподавателя __________________________________

Лабораторная работа № 5
Тема: Дерматомикозы. Диагностика. Профилактика и лечение.
Цель занятия: Ознакомление с биопрепаратами, применяемые для иммунизации животных.
Литература: И.А. Бакулов. Эпизоотология с микробиологией. с. 271 - 272
Задание № 1. Изучить методику взятия патологического материала для исследования на дер-
матомикозы животных, порядок исследования.
Задание № 2. Изучить методику применения препаратов ТФ-130, ЛТФ-130 для иммунизации
КРС против трихофитии.
Задание № 3. Изучить методы обработки больных животных.
Методика выполнения
Задание № 1.
Взятие патологического материала для исследования на дерматомикозы. В лабораторию посылают соскобы со свежепораженных участков кожи. Берут их с периферической части поражения, не подвергавшейся лечению (особенно настойкой йода). При помощи скальпеля и пинцета снимают чешуйки эпидермиса и свежие корки. С периферии свежепораженных участков осторожно выдергивают волосы с корнями. Материал собирают на бактериологические чашки или на пергаментную бумагу (полиэтиленовую пленку). Пересылают в закрытой стеклянной посуде.
Порядок обработки и исследования материала в лаборатории. Чешуйки, корочки и волосы помещают на часовое стекло и осторожно расщепляют прокаленными над пламенем горелки препаровальными иглами. Волосы и чешуйки переносят на предметное стекло в каплю 10%-ного раствора едкого натра или калия на 15 – 20 мин. затем небольшой кусочек материала препаровальной иглой переносят на предметное стекло в каплю 50%-ного водного раствора глицерина, накрывают покровным стеклом и исследуют сначала при малом (8*), затем при среднем (40*) увеличениях.
При положительных результатах в толще волос или вокруг них обнаруживают большое количество спор гриба-возбудителя.
Вместо раствора щелочи для обработки материала можно использовать лактофенол (фенол – 20г, молочная кислота – 20 мл, глицерин – 40, дистиллированная вода – 20 мл).
Люминесцентный метод диагностики микроспории. Исследование основано на способности волос, пораженных грибами из рода Microsporum, давать яркое зеленоватое свечение от ультрафиолетового облучения. Грибы из рода Trichophyton такой способностью не обладают. Для облучения используют ртутно – кварцевую лампу с горелкой типа ПРК-2 или ПРК-4, снабженную специальным светофильтром (фильтр или стекло Вуда), который пропускает только короткие ультрафиолетовые лучи. Для получения четких результатов исследуют только волосы, а не чешуйки. Материал следует брать с участков, не подвергавшихся лечению (в особенности лечению растворами йода).
Задание № 2.
Применение препарата ТФ-130 (ВИЭВ) для иммунизации крупного рогатого скота против трихофитии. Препарат используют в хозяйствах, неблагополучных по трихофонии. Иммунитет у привитых животных формируется в течение месяца после прививки. Вакцинируют внутримышечно двукратно. Шерсть на месте инъекции выстригают, кожу дезинфицируют спиртом. Дозы указаны в наставлении. Повторно препарат вводят через 10 – 14 дней, через 10 – 15 дней после этого на месте инъекции образуется тонкая корочка. Ее обрабатывать лечебными средствами нельзя; через 20 дней она самопроизвольно отторгается.

Задание № 3.
Лечение больных дерматомикозом животных. Проводят его в специально отведенных местах. Принимают меры, предупреждающие рассеивание возбудителя инфекции. Обрабатывать нужно сразу всю группу. Одновременно проводят очистку и дезинфекцию помещения, где находились больные животные. Необходимо тщательно обрабатывать пораженные участки кожи. Иногда предварительно смазывают пораженные места зеленым мылом с последующим удалением корочек.
Лечение при дерматомикозах состоит в удалении чешуек и корочек, выстригании волос на пораженном участке и нанесении лекарственного вещества: 20%-ного раствора медного купороса в нашатырном спирте; 10%-ной салициловой мази; креолина пополам со скипидаром; 10%-ного салицилового спирта; 5 – 10%-ной настойки йода; пасты ихтиола; березового дегтя, нагретого до 50*С; растительного масла, рыбьего жира, минеральных масел (вазелинового, дизельного, автола), нагретых до 150*С, и др.
Волосы, корочки, чешуйки на месте обработки собирают и сжигают, а само место дезинфицируют горячим 10%-ным раствором серно-карболовой смеси или формалин-керосиновой эмульсией.
Животное считается выздоровевшим после отрастания волос на пораженных участках.










































Отчёт

Задание №1

Вид патматериала
Инструменты
Обработка патматериала
Результат исследований

Трихофитил






















































Микроскопия








































Задание №2

Название вакцины
Вид, возраст животных
Место введения
Крат-ность
Доза, мл
Продолжите-льность иммунитета




















































































































































Задание №3

Название лекарственных средств

%
Метод
обработки
Кратность
обработки











































































































Вывод:_________________________________________________________________________
________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________

Дата ____________________ Подпись преподавателя __________________________________














Практическое занятие №6.
Тема: Диагностика и дифференциальная диагностика важнейших инфекционных болезней молодняка с.-х. животных.
Цель занятия: Приобретение навыков в диагностике важнейших инфекционных болезней
телят.
Литература: И.А.Бакулов. Эпизоотология с микробиологией. с. 289 – 293.
Задание № 1. Составить таблицу дифференциальной диагностики важнейших инфекционных болезней телят.
Задание № 2. Классификация болезней новорожденных животных.
Задание № 3. Провести обследование ветеринарно-санитарного состояния хозяйства. Составить акт обследования.
Методика выполнения
Навыки в диагностике и дифференциальной диагностике важнейших инфекционных болезней молодняка животных развиваются в сравнительном аспекте и анализе эпизоотических наблюдений, результатов использования средств специфической профилактики и лечения, а также результатов лабораторных исследований. Для удобства все сведения учащиеся самостоятельно вносят в таблицу, по которой и проводится анализ.

Таблица дифференциальной диагностики важнейших инфекционных болезней телят. (Для примера заполнены данные по диплококковой септицемии телят)

Признаки для дифференциации болезней
Диплококковая септицемия

Возбудитель
Ланцетовидный пневмококк (диплококк)

Эпизоотологическая дифференциация

Вид животных
Телята

Возраст
От нескольких дней до месяца, реже - старшего возраста

Источник возбудителя инфекции и факторы его передачи
Больные телята; матери, больные метритами, маститами. Молоко от больных коров

Предрасполагающие факторы
Неблагоприятные условия зимовки, плохие условия содержания, недостаток витаминов

Степень напряженности эпизоотического процесса (спорадические случаи, эпизоотия, панзоотия)
Чаще спорадические случаи, реже эпизоотии

Клиническая дифференциация

Течение болезни
Сверхострое, чаще острое, реже подострое и хроническое.

Температура тела, характер лихорадки
Высокая (40 - 42*С), лихорадка при остром течении постоянного типа, при подостром и хроническом – перемежающаяся

Состояние животного
Угнетение, вялость, снижение аппетита

Изменения на коже и видимых слизистых оболочках
Покраснение слизистой оболочки носа и конъюктивы, обильное слезоточение

Состояние сердечно-сосудистой системы
Сердечный толчок стучащий, пульс 120 - 140 в 1 мин

Состояние системы органов дыхания
Дыхание 70 - 80 в 1 мин, напряженное. Истечение из носовой полости, кашель.

Состояние системы органов пищеварения
Редко наблюдается понос

Изменения со стороны костно-мышечной системы (суставов и пр.)
Опухание, болезненность суставов конечностей в подострых случаях

Состояние нервной системы
Без видимых отклонений.

Патологоанатомическая дифференциация

Состояние серозных и слизистых оболочек (наличие кровоизлияний); изменения со стороны лимфатических узлов
Изменяются, кровоизлияния и фибринозные наложения на плевре, кровоизлияния под эпикардом. Лимфатические узлы увеличены, на разрезе сочные, с кровоизлияниями

Изменения со стороны печени, селезенки
Печень и селезенка увеличены, капсула селезенки напряжена ("каучуковая")

Изменения со стороны желудочно – кишечного тракта Изменение со стороны органов дыхания
Слизистая оболочка сычуга и тонкого кишечника гиперемирована, покрыта слизью

Изменение со стороны органов дыхания
В острых случаях – отек; в подострых и хронических – пневмония

Дифференциация с помощью специфических средств

Применение специфических сывороток, глобулинов
Дает лечебный эффект в начальной стадии болезни

Применение бактериофагов
Нет

Применение антибиотиков
Оказывает лечебное действие

Лабораторные исследования

Обнаружение возбудителя болезни (бактериологическое и вирусологическое исследования)
Выделение культуры диплококка. Положительная гемокультура.

Серологические исследования
Не разработано


После самостоятельного заполнения таблиц по различным болезням студенты проводят эпизоотологическое обследование конкретного хозяйства и по результатам составляют акт обследования хозяйства.
Примерный перечень вопросов, на которые нужно обратить внимание при обследовании хозяйства.
1. П р и а н а л и з е в о с п р о и з в о д с т в а с т а д а.Как организованы искусственное осеменение или случка в хозяйстве; как ведется журнал регистрации случек (осеменения) и отелов? Как организовано кормление быков – производителей, является ли полноценным их рацион? Какова нагрузка на одного быка – производителя при естественной случке или при искусственном осеменении?
2. С о д е р ж а н и е и к о р м л е н и е к о р о в. Как организовано кормление коров, является ли полноценным их рацион по содержанию белка, витаминов и минеральных веществ? Содержание коров (наличие прогулок и т.п.). Время запуска стельных коров (длительность сухостойного периода). Кормление коров в сухостойный период. Наблюдение за состоянием вымени у коров в сухостойный период. За сколько дней до ожидаемого отела корову переводят в родильное отделение? Каково общее ветеринарно–санитарное состояние коровников (чистота, своевременность уборки навоза, работа вентиляции, канализации и т.д.)? Гигиена дойки коров, чистота посуды. Как обрабатывается молоко непосредственно после дойки? Используется ли в хозяйстве поточно – цеховая система производства молока? Осуществляются ли прививки стельных коров против болезней молодняка; по какой схеме; как при этом определяют стельность?
3. Р о д и л ь н о е о т д е л е н и е.
оборудование родильного отделения и его санитарное состояние. Как подготавливается станок для приема роженицы?
Содержание коров в родильном отделении.
Санитарная обработка коров в родильном отделении.
Как производится прием новорожденного теленка?
Содержание и кормление коров после отела. Является ли полноценным их рацион?
Используется ли боксовая система в родильном отделении?
4. П р о ф и л а к т о р и й.
Как содержатся телята в профилактории, каковы размеры индивидуальных и групповых клеток? Оборудование и ветеринарно – санитарное состояние профилактория.
Кормление телят молозивом и молоком. Сколько раз в день производится выпойка; как подготовляют молозиво к выпойке? Гигиена поения, наличие сосковых поилок. Применяется ли кратковременное подсосное содержание телят, сколько дней?
Сколько дней кормят телят молоком матери?
Какие мероприятия проводятся в профилактории в целях недопущения возникновения и распространения инфекционных болезней телят (прививки вакцинами и сыворотками, обработка бактериофагами, применение антибиотиков и других средств, дезинфекция)?
5. Т е л я т н и к.
как содержатся телята в телятнике (индивидуальное или групповое содержание)? Прогулки.
Кормление телят; полноценность рациона, гигиена кормления.
Ветеринарно – санитарное состояние телятников (уборка навоза, работа вентиляции и канализации, своевременность побелки).
Как организовано летнее содержание телят?
Какие мероприятия проводят в телятниках в целях недопущения возникновения и распространения инфекционных болезней телят (прививки, применение бактериофагов, антибиотиков, проведение дезинфекции)?
6. И з о л я т о р.
Гигиенические нормативы помещения: отвечает ли оно требованиям, предъявленным к изоляторам для заразнобольных и подозрительных по заболеванию животных (удаление от животноводческих и жилых построек, оборудование и т.п.)?
Ветеринарно – санитарное состояние помещения, как проводятся уборка и обезораживание навоза? Наличие дезковриков, умывальников, мыла, дезинфицирующего раствора для обработки рук, санпропускника или помещения для обслуживающего персонала и хранения спецодежды.
Как организовано обслуживание животных, находящихся в изоляторе? Режим кормления.
Вместе со студентами преподаватель проводит клинический осмотр больных животных, находящихся в изоляторе; демонстрирует методы специфического и симптоматического лечения; показывает, как берут патологический материал для лабораторного исследования.











Отчёт

Задание №1

Признаки для дифференциации
Колибактериоз
Сальмонеллёз
Отёчная болезнь
Анаэробная дизентерия

Возбудитель





Эпизоотологическая дифференциация

Вид животных





Возраст











Источник возбудителя инфекции и факторы его передачи

















Предрасполагающие факторы











Степень напряжённости эпизоотического процесса (спорадические случаи, эпизоотия, панзоотия).























Клиническая дифференциация

Течение болезни











Температура тела, характер лихорадки











Состояние животного











Изменения на коже и видимых слизистых оболочках











Состояние сердечно-сосудистой системы











Состояние системы органов дыхания











Состояние системы органов пищеварения











Изменения со стороны костно-мышечной системы (суставов и пр.).











Состояние нервной системы.





Паталогоанатомическая дифференциация

Состояние серозных и слизистых оболочек (наличие кровоизлияний); изменения со стороны лимфатических узлов.























Изменения со стороны печени, селезёнки











Изменения со стороны желудочно-кишечного тракта.











Изменение со стороны органов дыхания.











Дифференциация с помощью специфических средств

Применение специфических сывороток, глобулинов.











Применение бактериофагов.





Применение антибиотиков.





Лабораторные исследования

Обнаружение возбудителя болезни (бактериологическое и вирусологическое исследование)

















Серологическое исследование.






Задание №2
Причины заболеваний
Название болезней






























































































Задание №3
АКТ эпизоотологического обследования
«_______» ____________________ 200___г.
____________________________________________________________________
(наименование хозяйства
_____________________________________________________________________
и населённого пункта)
Комиссия в составе ______________________________________________________________________
_______________________________________________________________________________________
(должность, Ф.И.О. членов комиссии)
в присутствии __________________________________________________________________________
составили настоящий акт о том, что сего числа было проведено эпизоотологическое обследование _______________________________________________________________________________________
(наименование хозяйства)
Установлено:
Поголовье сельскохозяйственных животных:
Крупный рогатый скот, всего: ______________________________________________________гол.
в т.ч. молодняк _____________________________________________________гол.
лошади, всего _____________________________________________________гол.
в т.ч. молодняк _____________________________________________________ гол.
овцы, всего _____________________________________________________ гол.
в т.ч. молодняк _____________________________________________________ гол.
птица _____________________________________________________ гол.
Размещение животных и вет.-сан. состояние помещений ________________________________
____________________________________________________________________________________
(по видам животных)
________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________
Кормление, водопой, уход и содержание животных ____________________________________
____________________________________________________________________________________
Комплектование животноводства хозяйства в течении последних лет осуществлялось
________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________
Благополучие хозяйства по заразным болезням ________________________________________
____________________________________________________________________________________
Связь с соседними населёнными пунктами и их благополучие ___________________________
____________________________________________________________________________________
Обоснование диагноза _____________________________________________________________
____________________________________________________________________________________
Дата появления заболевания ________________________________________________________
____________________________________________________________________________________
(среди какого вида и возраста животных)
Первые клинические признаки, диагностика выделения больных и результаты паталого-анатомического вскрытия и лабораторных исследований, что явилось источником возбудителя инфекции_____________________________________________________________
________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________
Какие мероприятия проводились по ликвидации заболевания ____________________________
________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________
Заключение: _____________________________________________________________________
________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________
Рекомендации: ___________________________________________________________________
____________________________________________________________________________________
(кому поручено разработать план мероприятий
____________________________________________________________________________________
по ликвидации заболевания)
____________________________________________________________________________________
Подписи:
Вывод:_________________________________________________________________________
________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________

Дата ____________________ Подпись преподавателя __________________________________











































Лабораторная работа № 6
Тема: Эмкар. Паратуберкулёз. Диагностика болезни, биопрепараты.
Цель занятия: Изучение методов диагностики болезни.
Литература: И.А. Бакулов. Эпизоотология с микробиологией. с. 348.
Задание № 1. Изучить и записать морфологию возбудителя Эмкара.
Задание № 2. Ознакомиться с биопрепаратами применяемыми при Эмкаре.
Задание № 3. Изучить методику взятия пат. материала от животных при подозрении на паратуберкулез.
Задание № 4. Освоить технику аллергического исследования на паратуберкулез.

Морфология возбудителя эмфизематозного карбункула. При микроскопии мазков из патологического материала возбудитель эмфизематозного карбункула имеет вид толстых с закругленными концами палочек, располагающихся поодиночке или парами. Споры, как правило, располагаются ближе к одному из полюсов микробной клетки. Капсула не образуется. Возбудитель эмфизематозного карбункула окрашивается всеми анилиновыми красками. В мазках из свежих культур и из патологического материала он грамположителен, в старых культурах – грамотрицателен.
Применение концентрированной гидроокисьалюминиевой формолвакцины против эмфизематозного карбункула КРС и овец. Формолвакцину ЭМКАР используют для прививок животных с предохранительной целью в пунктах, неблагополучных по эмфизематозному карбункулу. Вакцинируют КРС в возрасте от 3 мес до 4 лет; при возникновении болезни прививают весь скот. В хозяйствах, где пастбищный сезон длится свыше 6 мес, необходимо через 6 мес после первой вакцинации привить животных повторно.
При проведении прививок соблюдают установленные правила асептики и антисептики; инструмент стерилизуют кипячением. Вакцину вводят внутримышечно однократно в дозе 2 мл независимо от возраста и упитанности животных. Иммунитет у привитых животных возникает через 14 дней после прививки.
Аллергическая диагностика паратуберкулеза. Исследования проводят в хозяйствах, где установлены случаи заболевания животных паратуберкулезом (клинико – бактериологическими и патологоанатомическими методами). У КРС ставят внутрикожную пробу птичьим туберкулином. В средней трети шеи ножницами выстригают толщину кожной складки и записывают в опись животных. место введения дезинфицируют 3%-ным раствором фенола. Птичий туберкулин вводят внутрикожно в дозах (мл):
Телятам:
до 6 мес 0,1
от 6 до 12 мес 0, 15
КРС:
от 1 до 2 лет 0,2
от 2 до 3 лет 0,3
старше 3 лет 0,4 – 0,5
Учитывают реакцию через 48 ч, измеряя толщину кожной складки, куда был введен препарат, записывают результат. Положительно реагирующих изолируют, остальным вводят птичий туберкулин в то же место и в той же дозе. Реакцию на повторное введение препарата учитывают через 24 ч. (рис). Оценка реакции: положительная – разлитый отек на месте инъекции размером (35*45)(100*120) мм и более, напряженный в центре и тестоватой консистенции по краям, горячий и болезненный. Увеличение толщины складки на 7 мм и более подтверждает заключение; сомнительная реакция – недостаточно выраженный отек, увеличение кожной складки от 5 до 7 мм; отрицательная реакция – отсутствие изменений на месте инъекции.
Положительно реагирующих изолируют


0 часов 24 часа 48 часов 72 часа
Первое введение птичьего туберкулина

Вторая читка реакции и второе введение птичьего туберкулина сомнительно и отрицательно реагирующим животным

Вторая читка реакции

Сомнительно реагирующих изолируют до следующего исследования


Рис. Схема внутрикожного применения птичьего туберкулина для диагностики паратуберкулеза у КРС.
Животных с сомнительной реакцией изолируют и через 5 – 10 дней вновь исследуют двойной внутрикожной пробой птичьим туберкулином на другом участке кожи. Если при повторном исследовании будут вновь сомнительные реакции, то прибегают к подкожной пробе птичьим туберкулином, по результатам которой делают окончательное заключение.
Аллергическое исследование овец на паратуберкулез проводят сухим очищенным туберкулином для птиц. Его вводят в дозе 0,2 мл под кожу нижнего века (пальпебрально). Реакцию учитывают через 48 ч. Животных считают реагирующими, если при осмотре и пальпации века в месте введения препарата обнаруживают припухлость в сравнении с другим веком. Если невозможно ввести пальпебрально туберкулин, его вводят в кожу локтевой складки в дозе 0.2 мл. Реакцию учитывают через 48 ч. положительной реакцию считают при обнаружении припухлости на месте инъекции.











































Отчёт
Задание №1

Вид исследования
Микрокартина






































Задание №2

Название вакцины
Вид, возраст животного
Место введения
Доза, мл
Иммунитет



























































































































































































Задание №3

Для прижизненной диагностики
Для посмертной диагностики






































Задание №4

Вид, возраст животных
Место и метод введения
Название аллергена
Доза,
мл.
Время учёта
Результат


























































































































































































































Вывод:_________________________________________________________________________
________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________

Дата ____________________ Подпись преподавателя __________________________________










































Практическое занятие №7.

Тема: Лейкоз КРС. Ознакомление с основными разделами действующей инструкции по борьбе с лейкозом КРС.
Цель занятия: Закрепить теоретический материал по болезни лейкоз.
Литература: И.А. Бакулов. Эпизоотология с микробиологией. Инструкция по борьбе с лейкоз лейкозом КРС.
Задание№ 1. Изучить разделы действующей инструкции по борьбе с лейкозом КРС.
Задание №2. Разработать план оздоровления хозяйства от лейкоза (по задаче).

Отчёт

Задание №1

Разделы инструкции
Описание






































Задание №1

Профилактические мероприятия при лейкозе
Мероприятия по ликвидации лейкоза
































































1
2





































































































Вывод:_________________________________________________________________________
________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________

Дата ____________________ Подпись преподавателя __________________________________






Лабораторная работа № 7
Тема: Диагностика и дифференциальная диагностика болезней свиней.
Цель занятия: Приобретение навыков по диагностике болезней свиней.
Литература: И.А.Бакулов. Эпизоотология с микробиологией. с. 378 – 379.
Задание № 1. Приобрести навыки по диагностике и дифференциальной диагностике важней-
ших инфекционных болезней свиней.
Задание № 2. Ознакомиться с биопрепаратами, применяемыми при болезнях свиней.
Задание № 3. Ознакомиться с организацией прививок свиней.

Методика выполнения.
Диагностика и дифференциальная диагностика инфекционных болезней свиней. Студенты самостоятельно проводят анализ важнейших дифференцирующих признаков инфекционных болезней и составляют таблицу по схеме, предложенной преподавателем, которая включает: данные эпизоотологических, клинических и патологоанатомических наблюдений, результатов применения средств специфической профилактики и лечения, а также результатов лабораторных исследований. При составлении таблиц пользуются учебниками, руководствами, справочниками и Ветеринарным законодательством. Каждый студент решает конкретную задачу по дифференциации одной болезни, после чего проводят общее обсуждение в группе. После разбора с преподавателем составленных таблиц дальнейшее изучение раздела целесообразно проводить в свиноводческом хозяйстве (комплексе).

Таблица дифференциальной диагностики важнейших инфекционных болезней свиней.

Признаки для дифференциации
Болезни


Ящур
Везикулярная болезнь
Классическая чума
Африканская чума
Рожа
Болезнь Тешена
Пастереллез
Сальмонеллез
Листериоз
Болезнь Ауэски
Дизентерия
Вирусный гастроэнтерит
Инфлуенца (грипп поросят)


В хозяйстве студенты проводят эпизоотологическое обследование, затем клинически исследуют больных животных, берут материал для лабораторного исследования. При наличии трупов их вскрывают и подвергают патологоанатомическому исследованию. Необходимо обратить внимание учащихся на дифференциацию инфекционных болезней от незаразных болезней свиней.
Применение вирус-вакцин против классической чумы свиней их штаммов ЛК-ВНИИВВиМ, ЛК-К, ВГНКИ и АСВ из штамма К. Вакцины применяют в комплексе с общими противоэпизоотическими мерами в соответствии с действующей Инструкцией о мероприятиях по предупреждению и ликвидации классической чумы свиней и наставлениями по их применению. Перед применением вакцины растворяют в кипяченой охлажденной воде (18 – 20*С) или физрастворе, соблюдая правила асептики и предохраняя от прямых солнечных лучей, из расчета 2 мл растворителя на одну дозу вакцины. Применяют вакцину в течение 2 ч после растворения. Вводят ее внутримышечно в области шеи или внутренней поверхности бедра в объеме 2 мл, используя для каждого животного стерильную иглу. Свиноматок вакцинируют за 10 – 15 дней до осеменения (случки) 1 раз в год; поросят – с 30-дневного возраста, ревакцинируют в 60-дневном возрасте или в возрасте 85 – 100 дней.
При угрозе заноса инфекции в хозяйства, где вакцинация против чумы свиней не проводилась, прививают всех животных, начиная с 1-дневного возраста. У части привитых здоровых животных может повышаться температура тела на 1*С на 3 – 7-й день после вакцинации при удовлетворительном общем состоянии и сохранении аппетита.
В неблагоприятном пункте, хозяйстве после вакцинации возможны заболевание и падеж тех животных, которые уже были инфицированы эпизоотическим вирусом чумы свиней и находились в инкубационном периоде болезни.
Применение вакцины против рожи свиней из штамма ВР2 для предохранительных и вынужденных прививок свиней. Профилактической вакцинации подлежат свиньи в возрасте 2,5 мес и старше. Вакцину вводят внутримышечно. Поросят 2 – 4-месячного возраста прививают в дозе 0,5 мл; ревакцинируют через 25 – 35 дней в дозе 1 мл и еще раз через 4 – 5 мес в дозе 1 мл. Свиней старше 4 мес прививают в дозе 1 мл; ревакцинируют через 4 – 5 мес в дозе 1 мл.
Применение сухой вирусвакцины ВГНКИ против болезни Ауэски для вакцинации свиней в неблагополучных и непосредственно угрожаемых по данной болезни хозяйства. Вакцинируют всех клинически здоровых свиней с 2-дневного возраста. Перед применением вакцину разводят стерильным физраствором из расчета 2 мл массы на 50 мл физраствора.
Препарат вводят подкожно двукратно с интервалом 20 – 25 дней в дозах 0,5 – 2 мл в зависимости от возраста. Поросят – сосунов, привитых в возрасте 2 – 15 дней, ревакцинируют после второй прививки через 2 мес однократно в дозе 2 мл; взрослых свиней ревакцинируют через 11 – 12 мес однократно в дозе 2 мл. Иммунитет наступает через 5 – 7 дней и сохраняется до года (кроме поросят – сосунов, которых ревакцинируют как было указано выше).
Применение сыворотки против рожи свиней. Сыворотку против рожи свиней вводят с лечебной и профилактической целями подкожно или внутримышечно в дозах (мл):
С лечебной целью С профилактической целью
Поросятам – сосунам 5 – 10 3 - 5
Подсвинкам до 50 кг 30 – 50 5 – 10
Свиньям свыше 50 кг 50 – 70 10 – 20
Задание №3

Организация прививок свинопоголовья

Вакцинацию животных проводят в сроки, определённые планом противоэпизоотических мероприятий. Своевременно информация доводится до сведения владельцев животных, руководителей хозяйств.
Перед началом вакцинации проводится осмотр всех животных подлежащих вакцинации, в случае необходимости проводят термометрию.

Фиксация свиней

Поросят и подсвинков поднимают за задние конечности. Крупным свиньям вакцинацию проводят без фиксации. Неспокойных животных берут за конечности и кладут на бок или металлическими щипцами сдавливают верхнюю челюсть.




Техника введения

Место введения биопрепаратов – внутренняя конечность бедра, основание уха. Вводят разными способами, рекомендованные наставлением: п/к, в/м.
При п/к способе вакцину вводят в подкожную клетчатку. Для этого пальцами левой руки берут складку кожи, оттягивают её, делая треугольник, в основу которого с помощью шприца и инъёкционной иголки вводят дозу вакцины.
При в/м способе вакцину вводят непосредственно в толщу мышц.
За привитыми животными устанавливают наблюдение до полного окончания реакции. В случае осложнений оказывают помощь.












































Отчёт

Задание №1

Признаки дифференц.
Б о л е з н и


Классичес-кая чума
Африкан-ская
чума
Рожа
Болезнь Тешена
Пастерел-лёз
Сальмонел-лёз
Листериоз
Болезнь Ауески
Дизентерия
Вирусный гастроэнте-рит

Возбудитель











Эпизоотологическая дифференциация

Вид животных











Возраст











Источник возбудителя инфекции и факторы его передачи











Предрасполагающие факторы











Степень напряженности эпизоотического процесса (спорадические случаи, эпизоотия, панзоотия)











Клиническая дифференциация

Течение болезни











Температура тела, характер лихорадки











Состояние животного











Изменения на коже и видимых слизистых оболочках











Состояние сердечно-сосудистой системы











Состояние системы органов дыхания











Состояние системы органов пищеварения











Изменения со стороны костно-мышечной системы (суставов и пр.)











Патологоанатомическая дифференциация

Состояние серозных и слизистых оболочек (наличие кровоизлияний); изменения со стороны лимфатических узлов











Изменения со стороны печени, селезенки











Изменения со стороны желудочно – кишечного тракта Изменение со стороны органов дыхания











Изменение со стороны органов дыхания











Дифференциация с помощью специфических средств

Применение специфических сывороток, глобулинов











Применение бактериофагов











Применение антибиотиков











Лабораторные исследования

Обнаружение возбудителя болезни (бактериологическое и вирусологическое исследования)











Серологические исследования











Задание №2

Название биопрепарата
Возраст
Кратность применения
Метод введения, доза, мл.
Ревакцинация
Иммунитет



























































































































































































































Задание №3

Фиксация животных
Методы введения биопрепарата





































Вывод:_________________________________________________________________________
________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________

Дата ____________________ Подпись преподавателя __________________________________










































Лабораторная работа № 8
Тема: Сап. Клинический осмотр и маллеинизация лошадей. ИНАН, диагностика.
Цель занятия: Приобрести навыки в проведении клинического осмотра лошадей и
проведения и маллеинизации.
Литература: И.А. Бакулов. Эпизоотология с микробиологией с. 402 – 407.
Задание № 1. Изучить методику проведения глазной маллеинизации лошадей.
Ознакомиться с правилами учета реакции.
Задание № 2. Изучить методику проведения клинического осмотра лошадей
при подозрении на инфекционную анемию.
Задание № 3. Решение задач.

Методика выполнения.
При жизни сап диагностируют по клинической картине, результатам маллеинизации и исследования крови по РСК.
Симптомы сапа у лошадей довольно характерны. При исследовании надо дифференцировать сап от мыта и эпизоотического лимфангита. Осматривать лошадей следует в защитном костюме, соблюдая все меры предосторожности, обязательные при работе с особо опасными зоонозными болезнями.
Клинический осмотр лошади на сап рекомендуется проводить в такой последовательности:
внешний осмотр лошади и исследование наружных покровов. Обращают внимание на состояние упитанности лошади, так как при хроническом сапе лошади могут быть плохо упитанными. При сапе на коже обнаруживают язвы, рубцы. Утолщения, главным образом на конечностях. Наблюдается воспаление лимфоузлов и сосудов, которые набухают и выступают над поверхностью кожи в виде шнуров. Иногда отмечают утолщение задних конечностей (слоновость). У жеребцов могут быть орхиты;
изменение температуры тела. При сапе возможна высокая температура тела, в особенности в начале болезни;
исследование подчелюстных лимфоузлов. При остром сапе с поражением носовой полости подчелюстные лимфоузлы горячие, болезненные, не резко отграниченные. При хронических случаях подчелюстные лимфоузлы плотные, бугристые, неподвижные, холодные, безболезненные;
исследование носовой полости начинают с внешнего осмотра. При сапе наблюдается носовое истечение различного характера. Дальнейшее исследование носовой полости проводят с помощью рефлектора (глазного зеркала). Для этого лошадь ставят хвостом к источнику света. Помощник несколько приподнимает голову. Оператор становится лицом к свету спереди головы лошади и несколько в стороне. Большим и указательным пальцами левой руки он расширяет ноздри лошади, а правой рукой улавливает свет при помощи рефлектора направляет его в носовую полость. Осматривать носовую полость следует как можно глубже. При сапе у лошадей на носовой перегородке могут быть язвы или звездчатые рубцы;
в заключение клинического осмотра исследуют легкие с помощью аускультации и перкуссии. При легочной форме сапа, которая протекает в виде пневмонии, наблюдаются отклонения со стороны органов дыхания, кашель.
Маллеинизация лошадей. Маллеин для диагностики сапа применяют у лошадей, мулов, ослов и верблюдов. Его вводят путем аппликации на конъюнктиву глаза или подкожно (редко).
Основной метод диагностики сапа – глазная маллеинизация (офтальмомаллеинизация). Предварительно проверяют состояние глаз у лошади, так как маллеинизацию можно проводить только на здоровом глазе. Как правило, маллеин наносят на коъюнктиву левого глаза. Берут стерильную глазную пипетку, вскрывают ампулу с маллеином, наполняют пипетку, открывают глаз большим и указательным пальцами левой руки и наносят на конъюнктиву 3 – 4 капли маллеина.
Для каждой лошади используют отдельную стерильную пипетку. Отработавшие пипетки и ампулы из-под маллеина стерилизуют кипячением.
Реакцию учитывают через 3, 6, 9, 12 и 24 ч после введения маллеина. При учете результатов обязательно нужно открывать глаз лошади. На весь период исследования (сутки) лошадей освобождают от работы и держат на коновязи.
П о л о ж и т е л ь н а я р е а к ц и я – гнойный конъюнктивит различной степени. Конъюнктива интенсивно краснеет, набухает, веки припухают, глаз закрывается, в глазной щели по краю нижнего века появляется шнурок гноя, спускающийся у внутреннего угла глаза. При слабовыраженной реакции гной обнаруживают только во внутреннем углу глаза.
С о м н и т е л ь н а я р е а к ц и я - интенсивное покраснение глаза, припухлость век и слезотечение; во внутреннем углу глаза незначительное количество гноя (не большие капли).
О т р и ц а т е л ь н а я р е а к ц и я - состояние глаза не изменяется. Или наблюдается легкое покраснение конъюнктивы и слезотечение.
Лошадям с отрицательной или сомнительной реакцией через 5 – 6 дней повторно вводят маллеин в тот же глаз. С лошадьми. Давшими положительную или вторично сомнительную реакцию, поступают согласно инструкции по борьбе с сапом.
На всех лошадей, подвергавшихся маллеинизации, составляют опись с указанием номера и клички лошади, пола и примет. Даты введения маллеина, результатов учета реакции через 3, 6, 9, 12 и 24 ч, даты повторной маллеинизации (через 5 – 6 дней) и общего результата. Результаты маллеинизации оформляют актом, указывая наименование населенного пункта (хозяйства), дату обработки, кто ее проводил, сколько лошадей подвергалось маллеинизации, каким препаратом проводили обработку (серия, биофабрика, изготовившая маллеин, срок годности, номер государственного контроля), каким методом вводили препарат, общий расход маллеина, результаты исследования: сколько лошадей выделено с положительной, сомнительной и отрицательной реакциями. Клички и номера положительно и сомнительно реагирующих. Акт подписывают ветеринарные специалисты, а также заведующий фермой, бригадир.

При подозрении на инфекционную анемию лошадей (ИНАН) проводят клинический осмотр лошади в следующей последовательности:
внешний осмотр, исследование слизистых оболочек и наружных покровов. Особое внимание при этом обращают на упитанность животного. При ИНАН наблюдают исхудание, снижение аппетита, общую слабость и вялость, нередко слабость зада. Отмечают отечность в области подгрудка, брюха, задних конечностей, препуция и мошонки. Слизистые оболочки глаз отечны, с желтушным («маслянистым») оттенком и кровоизлияниями. Их наблюдают также на слизистой оболочке носовой полости и зыка;
изменение температуры тела. Для острого течения ИНАН, а также для периодов обострения при хроническом и подостром течениях болезни характерно повышение температуры тела до 40 – 41*С и выше;
исследование сердечно – сосудистой системы. У больных ИНАН лошадей отмечают учащение пульса (60 – 90 ударов в минуту), усиление сердечного толчка, повышение сердечной возбудимости, иногда аритмию и функциональные шумы.
Проба на возбудимость. У лошади подсчитывают число ударов сердца в 1 мин в спокойном состоянии, прогоняют ее 100 м рысью и вновь подсчитывают число ударов в 1 мин, записывая результаты за каждые 10 с. Полученные числа складывают и сумму, показывающую число ударов в 1 мин после пробега, сравнивают с числом ударов в 1 мин до пробега. У больных ИНАН лошадей сердцебиение резко увеличивается. Характерно сильное увеличение числа ударов в первые 10 – 15 с после пробега. Можно высчитать индекс сердечной возбудимости. Для этого число ударов после пробега нужно разделить на число ударов до пробега. У здоровых лошадей индекс составляет около 1,5; у больных ИНАН лошадей он может быть 2,5.
Гематологические исследования при подозрении на ИНАН.
1. О п р е д е л е н и е СОЭ. В пробирку Неводова (эритроседиометр) насыпают 0,03 г порошка щавелевокислого натрия (на кончике скальпеля) или наливают 1 мл 5%-ного раствора лимонного натрия. Кровь для определения в количестве 12 мл или до черты 0 берут из яремной вены. Пробирку закрывают пробкой, кровь в ней 10 – 15-кратным медленным переворачиванием перемешивают с порошком щавелевокислого натрия. Затем пробирку устанавливают вертикально и каждые 15 мин в течение первого часа отмечают уровень оседания эритроцитов. Последнюю запись делают через 25 ч. У лошадей. Больных ИНАН, СОЭ увеличена6 в первые 15 мин – 60 – 70 делений, у здоровых – 30 – 36.
2. О п р е д е л е н и е к о л и ч е с т в а г е м о г л о б и н а проводят с помощью эритроседиометра Неводова (цифры на правой стороне пробирки от 25 до 125 показывают процентное содержание гемоглобина, а цифры на левой стороне от 2 до 14 – количество эритроцитов в млн) или пользуются гемометром Сали. В градуированную пробирку наливают до метки 20 децинормальный (0,1 н.) раствор соляной кислоты. Кровь из ушной вены насасывают в капилляр до метки 20 м 3 и переносят в пробирку с соляной кислотой; капилляр несколько раз промывают соляной кислотой и удаляют из пробирки, а в пробирку приливают по каплям дистиллированную воду до тех пор, пока цвет испытуемой жидкости не совпадает с цветом стандарта, после этого с помощью нанесенных на пробирке делений по верхнему уровню жидкости определяют процентное содержание гемоглобина.
У лошадей, больных ИНАН, количество гемоглобина по сравнению со здоровыми лошадьми снижается на 15 – 50%.
3. П о д с ч е т э р и т р о ц и т о в и л е й к о ц и т о в. Меланжеры, или смесители, - это капиллярные трубочки с делениями. Меланжер с цифрами 0,5; 1,0; 101 предназначены для подсчета эритроцитов; меланжер с цифрами 0,5; 1,0; 11 – для подсчета лейкоцитов. Кровь берут из ушной вены. Для подсчета эритроцитов ее набирают до метки 0,5 или 1,0. Затем в этот же меланжер набирают до метки 101 3%-ный раствор хлористого натрия. Для подсчета лейкоцитов кровь набирают до метки 0,5 или 1,0. В этот же меланжер набирают до метки 11 1%-ный раствор уксусной кислоты (подкрашенный 3 каплями 1%-ного раствора генцианвиолета).
После заполнения меланжера концы его зажимают между большим и указательным пальцами и плавным движением смешивают кровь с жидкостью.
Число эритроцитов можно определить и с помощью обыкновенной пробирки. В нее насыпают 0,05 г лимоннокислого натрия и наливают 10 мл крови, взятой из яремной вены. Перемешав содержимое, пробирку ставят в штатив и через 24 ч учитывают результат – высоту столба эритроцитов в миллиметрах умножают на коэффициент 216000. Произведение показывает число эритроцитов в 1 мм 3 крови. При ИНАН число эритроцитов снижается.
4. П о д с ч е т л е й к о ф о р м у л ы и и с к л ю ч е н и е к р о в е п а р а з и т а р н ы х б о л е з н е й. Мазки крови фиксируют, окрашивают и под микроскопом определяют лейкоцитарную формулу. У больных ИНАН лошадей количество лимфоцитов в формуле белой крови увеличено.















Отчёт

Задание №1

Клинический осмотр
Место введения
Доза
Время
учёта
Повторное введение
Результат





















































































































































Задание №2 а)

Последовательность клинического осмотра
Характеристика
































































Задание №2 б)
Клиническое состояние
Спокойное состояние
Пробег
Индекс серд. возб.











































































































Задание №2 в).

Клиническое состояние
СОЭ
Количество гемоглобина
Количество эритроцитов
Количество лейкоцитов

Здоровое животное



























































Больное животное



































































Вывод:_________________________________________________________________________
________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________

Дата ____________________ Подпись преподавателя __________________________________










































Лабораторная работа № 9
Тема: Болезни птиц. Ознакомление с техникой вакцинации при болезнях птиц.
Цель занятия: Освоение методов введения биопрепаратов при болезнях птиц.
Литература: И.А. Бакулов. Эпизоотология с микробиологией с. 434 – 435.
Задание № 1. Изучить методику кровекапельной реакции агглютинации.
Задание № 2. Ознакомиться с биопрепаратами применяемых при оспе птиц.
Задание № 3. Ознакомиться с биопрепаратами применяемыми при болезни Ньюкасла.
Задание № 4. Ознакомиться с биопрепаратами применяемыми при сальмонеллезе птиц.

Методика выполнения.
Диагностика пуллороза птиц реакцией агглютинации с каплей крови (ККРА). Цветной антиген для кровекапельной реакции выпускают в виде жидкости фиолетового цвета. Перед употреблением его тщательно взбалтывают. Температура помещения, где проводят исследование, не должна быть ниже 18*С.
На предметное стекло глазной пипеткой наносят две капли антигена. Кровь берут у птиц из гребня или подкрыльной вены путем укола или надреза. Каплю крови вносят в каплю антигена (соотношение крови и антигена 1:2). Смешивают кровь с антигеном покачиванием предметного стекла на грелке – качалке при температуре 35 – 37*С. П о л о ж и т е л ь н а я р е а к ц и я – появление хорошо заметных фиолетовых хлопьев и просветление смеси антигена с кровью в срок от нескольких секунд до двух минут; с о м н и т е л ь н а я р е а к ц и я – отсутствие или слабовыраженное просветление и появление зернистости или небольшого количества хлопьев; о т р и ц а т е л ь н а я р е а к ц и я – отсутствие хлопьев и просветления среды в капле крови.
Применение эритроцитарного антигена (ККРНГА). Пуллорный эритроцитарный антиген для кровекапельной реакции непрямой гемагглютинации – жидкость коричневого цвета, содержащая сенсибилизированные эритроциты.
Исследуют птицу в возрасте 50 – 55 дней и повторно в 7 мес. Каплю крови на предметном стекле смешивают с каплей антигена (соотношение 1:1) покачиванием предметного стекла на грелке – качалке при 37 – 40*С.
П о л о ж и т е л ь н а я р е а к ц и я – в течение 2 мин в смеси крови с антигеном выпали хорошо заметные хлопья коричневого цвета; с о м н и т е л ь н а я р е а к ц и я – слабовыраженные мелкозернистые хлопья коричневого цвета; о т р и ц а т е л ь н а я р е а к ц и я – равномерная стабильная гомогенная взвесь эритроцитов.
Положительно и сомнительно реагирующих птиц убивают.
Применение эмбрионвирусакцины из голубиного вируса против оспы птиц. Вакцина оспы птиц – высушенный вирус оспы голубей, культивированный на куриных эмбрионах. Вместе с вакциной для ее разведения прилагают флаконы с 25%-ным раствором глицерина на физрастворе. Вакцину применяют в неблагополучных и угрожаемых по оспе птиц хозяйствах. Вакцинируют кур, индеек, фазанов и цесарок, начиная с 25-дневного возраста. Прививают только клинически здоровую птицу. Перед обработкой содержимое ампулы высыпают в стерильную ступку, растирают пестиком и разводят раствором глицерина в количестве, указанном на этикетке. С наружной стороны голени выщипывают перья на площади 5 – 6 см2 (20 – 25 перьев фолликул), наносят 2 – 3 капли вакцины и в этот участок кожи с помощью коротко остриженной волосяной щеточки или стеклянной палочки с шероховатой поверхностью втирают разведенную вакцину. Инструменты для втирания должны быть предварительно прокипячены. Втирать вакцину следует осторожно, без травматизации кожи, но достаточно энергично. Всю вакцинированную птицу просматривают через 7 – 9 дней. Реакция на вакцину выражается в припухании и покраснении фолликул. Птицу, не давшую реакцию, вакцинируют повторно. Иммунитет наступает через 15 – 20 дней после вакцинации и сохраняется до 3 месяцев у молодняка и до 6 месяцев у взрослой птицы. Ревакцинацию птицы проводят в сроки, указанные в наставлении.
Техника прививок птиц против ньюкаслской болезни. Занятия проводят в птицеводческих хозяйствах (птицефабриках) или клинике техникума. Преподаватель объясняет и показывает способы применения различных вакцин против ньюкаслской болезни студенты разбиваются на группы по 3 человека; они самостоятельно подготавливают вакцины и вакцинируют птицу (при прививках в условиях неблагополучного хозяйства студентам дают соответствующие вакцины, в остальных случаях вместо биопрепаратов применяют стерильный физраствор). В заключение студенты составляют акт на проведенную вакцинацию.
Сухую вирус-вакцину против ньюкаслской болезни птиц из штамм В1 применяют с профилактической целью в хозяйствах, благополучных по ньюкаслской болезни. Прививают только клинически здоровую птицу по схемам, приведенным в наставлении по применению этой вакцины. Вирус-вакцину применяют интраназально или аэрозольно. Содержимое одной ампулы (500 назальных доз) растворяют в 50 мл дистиллированной воды. Две капли разведенной вакцины из глазной пипетки закапывают в ноздри птицы, при этом другую ноздрю закрывают пальцем, чем достигается более глубокое введение вакцины в носовую полость. Иммунитет наступает к 8 – 10-му дню.
Сухую вирус-вакцину против ньюкаслской болезни птиц из штамма Ла-Сота применяют в неблагополучных и неблагополучных по этой болезни хозяйствах по соответствующим схемам, приведенным в наставлении по применению этого препарата. Вакцину вводят интраназально, аэрозольно или путем выпаивания. Для этого содержимое одной ампулы разводят в 1 л кипяченой воды. Разведенную вакцину дают птице на одну выпойку из расчета по 5 мл на одного цыпленка до 25-дневного возраста, по 7.5 мл до 45-дневного возраста, по 10 мл старше 45-дневного возраста и по 15 мл взрослой птице. Иммунитет наступает на 8 – 10-й день.
Вирус - вакцины против ньюкаслской болезни из штаммов В1 и Ла-Сота применяют аэрозольным методом в соответствии со специальными наставлениями.
Вакцинация птиц поливалентной вакциной против сальмонеллеза и колибактериоза птиц. Вакцину применяют с профилактической целью водоплавающей птице (молодняку с 7 – 10-дневного возраста и взрослой птице перед яйцекладкой), а также голубям. Вводят вакцину подкожно в дозах (мл):


Молодняку
Взрослой птице


1-й раз
2-й раз
3-й раз
1-й раз
2-й раз
3-й раз

Водоплавающая птица
0,25 - 0,5
0,5 - 1,0
-
0,5 – 1,0
1,0 – 1,5
1,5 – 2,0

Голуби
0,25
0,25 – 0,5
-
0,5 – 1,0
1,0 – 1,5
-


















Отчёт

Задание №1

Вид птицы, возраст птицы
Название антигена
Соотношение крови и антигена
t0
проведения реакции
Результат


























































































































Задание №2

Название биопрепарата
Вид птицы
Возраст птицы
Ревакци-нация
Метод введения
Доза,
мл
Имму-нитет

































































































































































Задание №3

Название биопрепарата
Вид птицы
Возраст птицы
Метод введения
Доза, мл
Ревак-цинация
Имму-нитет










































































































































































Задание №4

Название биопрепарата
Вид птицы
Возраст птицы
Метод введения
Доза, мл
Ревак-цинация
Имму-нитет










































































































































































Вывод:_________________________________________________________________________
________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________

Дата ____________________ Подпись преподавателя __________________________________











13PAGE 15


13PAGE 1410315



Рис.1.Схема устройства микроскопа:

1- ножка микроскопа; 2- макрометрический винт; 3-тубосодержатель; 4-окуляр; 5-тубус; 6-объектив; 7-револь-вер; 8-предметный столик;9-конден-сор; 10-зеркало; 11-микрометрический винт



Заголовок 2Заголовок 3Заголовок 4Заголовок 5Заголовок 6Заголовок 8Заголовок 915